| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-18页 |
| 研究现状、成果 | 第13-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、大鼠骨髓间充质干细胞的分离、原代、传代培养、鉴定及实验性自身免疫性葡萄膜炎动物模型的制作 | 第18-25页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-21页 |
| 1.1.1 实验对象 | 第18-20页 |
| 1.1.2 实验方法 | 第20-21页 |
| 1.2 结果 | 第21-23页 |
| 1.2.1 大鼠骨髓间充质干细胞的分离与培养、鉴定 | 第21页 |
| 1.2.2 大鼠骨髓间充质干细胞的鉴定 | 第21-23页 |
| 1.3 讨论 | 第23-24页 |
| 1.3.1 MSCs分离及培养方法的选择 | 第23页 |
| 1.3.2 动物及培养基的选择与MSCs的鉴定 | 第23-24页 |
| 1.4 小结 | 第24-25页 |
| 二、MSCs对EAU病程中各型免疫因子表达变化的动态影响 | 第25-66页 |
| 2.1 对象和方法 | 第25-32页 |
| 2.1.1 对象 | 第25-27页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第27-32页 |
| 2.2 结果 | 第32-53页 |
| 2.2.1 大鼠眼部症状观察及炎症评分 | 第32-36页 |
| 2.2.2 组织病理学观察及评分 | 第36-40页 |
| 2.2.3 MSCs对各组大鼠房水相关免疫因子表达水平的动态影响 | 第40-42页 |
| 2.2.4 MSCs与EAU脾脏淋巴结单个核细胞共培养后对相关免疫细胞因子表达水平的影响 | 第42-44页 |
| 2.2.5 MSCs对EAU各时间点脾脏淋巴结单个核细胞相关免疫因子表达水平的动态影响 | 第44-49页 |
| 2.2.6 MSCs对EAU病程中各时间点脾脏淋巴结Th17细胞群、Treg细胞群的动态影响 | 第49-53页 |
| 2.3 讨论 | 第53-65页 |
| 2.3.1 EAU的发病机制 | 第53-56页 |
| 2.3.2 MSCs与EAU | 第56-59页 |
| 2.3.3 MSCs对EAU的治疗作用明显 | 第59-60页 |
| 2.3.4 MSCs抑制了EAU病程中Th1、Th17致病效应细胞群及相关细胞因子的表达 | 第60-63页 |
| 2.3.5 MSCs增加了EAU病程中Th2、Treg细胞群及相关细胞因子的表达 | 第63-65页 |
| 2.4 小结 | 第65-66页 |
| 三、IL-27在MSCs对EAU免疫调节机制中的作用 | 第66-77页 |
| 3.1 对象和方法 | 第67-69页 |
| 3.1.1 对象 | 第67-68页 |
| 3.1.2 实验方法 | 第68-69页 |
| 3.2 结果 | 第69-72页 |
| 3.2.1 MSCs与EAU大鼠脾脏淋巴结单个核细胞共培养促进了IL-27的表达 | 第69-70页 |
| 3.2.2 IL-27在各组大鼠脾脏淋巴结单个核细胞培养上清液表达量的动态变化 | 第70-71页 |
| 3.2.3 IL-27在各组大鼠房水中的表达变化 | 第71-72页 |
| 3.3 讨论 | 第72-76页 |
| 3.3.1 IL-27与自身免疫性疾病 | 第72-75页 |
| 3.3.2 MSCs对EAU的免疫调节作用机制部分是通过上调IL-27的表达实现的 | 第75-76页 |
| 3.4 小结 | 第76-77页 |
| 全文结论 | 第77-78页 |
| 论文创新点 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-90页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第90-91页 |
| 综述 | 第91-113页 |
| 综述参考文献 | 第106-113页 |
| 致谢 | 第113页 |
