| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 绪论 | 第11-20页 |
| 1.1 概述 | 第11页 |
| 1.2 黄芩资源及生物学特性 | 第11-12页 |
| 1.3 黄芩的化学成分 | 第12页 |
| 1.4 黄酮类化合物的理化性质 | 第12-13页 |
| 1.5 国内外研究概况 | 第13-17页 |
| 1.5.1 黄芩药理研究的国内现状与进展 | 第13-16页 |
| 1.5.2 植物细胞工程的研究现状 | 第16-17页 |
| 1.6 黄芩苷的提取 | 第17-18页 |
| 1.7 黄芩苷在不同组织和器官中的分布 | 第18-19页 |
| 1.8 本论文的研究内容及意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-26页 |
| 2.1 材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.1.3 实验所用药品及其配制 | 第21-22页 |
| 2.2 方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 煎煮法提取黄芩苷 | 第22页 |
| 2.2.2 温浸法提取黄芩苷 | 第22页 |
| 2.2.3 加碱温浸法提取黄芩苷 | 第22-23页 |
| 2.2.4 超声波法提取黄芩苷 | 第23页 |
| 2.2.5 微波法提取黄芩苷 | 第23页 |
| 2.2.6 黄芩苷含量测定 | 第23页 |
| 2.2.7 黄芩苷的纯化 | 第23-24页 |
| 2.2.8 黄芩实生苗的培养 | 第24页 |
| 2.2.9 黄芩愈伤组织的诱导 | 第24页 |
| 2.2.10 黄芩实生苗根、茎叶及愈伤组织黄芩苷的提取 | 第24页 |
| 2.2.11 悬浮细胞培养 | 第24-26页 |
| 3 结果与讨论 | 第26-53页 |
| 3.1 黄芩苷提取方法的选择 | 第26-44页 |
| 3.1.1 标准曲线的绘制 | 第26页 |
| 3.1.2 煎煮法、温浸法、加碱温浸法提取黄芩苷的结果 | 第26-27页 |
| 3.1.3 超声法提取黄芩苷的结果 | 第27-35页 |
| 3.1.4 微波法提取提取黄芩苷的结果 | 第35-44页 |
| 3.1.5 黄芩中黄芩苷提取方法的确定 | 第44页 |
| 3.2 黄芩苷纯化工艺的研究 | 第44-49页 |
| 3.2.1 最大吸收波长的确定 | 第44-45页 |
| 3.2.2 黄芩苷纯化工艺的选择 | 第45-49页 |
| 3.3 黄芩不同部位中黄芩苷含量的测定分析 | 第49页 |
| 3.4 黄芩愈伤组织细胞培养条件对黄芩苷生成量的影响 | 第49-53页 |
| 3.4.1 LH 的浓度对悬浮细胞及培养液中黄芩苷含量的影响 | 第49-50页 |
| 3.4.2 不同浓度不同处理时间的 YE 对悬浮细胞及培养液中黄芩苷含量的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.3 不同浓度不同处理时间 SA 对悬浮细胞及培养液中黄芩苷含量的影响 | 第51-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-57页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
