摘要 | 第3-7页 |
ABSTRACT | 第7-10页 |
第一章 前言 | 第14-17页 |
第二章 纳米二氧化硅致SD雄性大鼠精子毒性的研究 | 第17-27页 |
2.1 材料与仪器 | 第17-18页 |
2.1.1 受试物 | 第17页 |
2.1.2 实验动物 | 第17页 |
2.1.3 主要试剂 | 第17页 |
2.1.4 主要仪器 | 第17-18页 |
2.1.5 试剂制备 | 第18页 |
2.2 实验方法 | 第18-20页 |
2.2.1 纳米二氧化硅的表征 | 第18页 |
2.2.2 染毒方式 | 第18-19页 |
2.2.3 附睾精子检查 | 第19页 |
2.2.4 睾丸组织石蜡切片病理学观察 | 第19-20页 |
2.2.5 统计分析 | 第20页 |
2.3 结果 | 第20-25页 |
2.3.1 纳米二氧化硅的表征 | 第20-23页 |
2.3.2 纳米二氧化硅染毒对大鼠附睾精子的影响 | 第23页 |
2.3.3 睾丸组织病理学变化 | 第23-25页 |
2.4 讨论 | 第25-27页 |
第三章 纳米二氧化硅对睾丸组织DNA损伤修复基因及凋亡相关基因表达的影响研究 | 第27-46页 |
3.1 材料与方法 | 第27-35页 |
3.1.1 主要试剂 | 第27页 |
3.1.2 主要仪器 | 第27页 |
3.1.3 试剂配制 | 第27-28页 |
3.1.4 Oggl、MGMT、Caspase-3、Bcl-2、Bax和内参基因GAPDH的引物设计 | 第28-29页 |
3.1.5 睾丸组织内总RNA的提取及完整性和纯度的鉴定 | 第29-30页 |
3.1.6 标准曲线和溶解曲线的建立 | 第30-31页 |
3.1.7 荧光定量检测Oggl、MGMT、Caspase-3、Bcl-2、Bax mRNA水平 | 第31-32页 |
3.1.8 检测Caspase3、BAX、Bcl2蛋白表达的相对变化量 | 第32-35页 |
3.2 结果 | 第35-42页 |
3.2.1 RNA纯度和完整性分析 | 第35-36页 |
3.2.2 标准曲线及溶解曲线分析以及PCR条件探索分析 | 第36-38页 |
3.2.3 Q-PCR方法检测分析纳米二氧化硅染毒后Oggl、MGMT mRNA表达水平相对变化 | 第38-41页 |
3.2.4 纳米二氧化硅暴露对SD雄性大鼠睾丸凋亡相关蛋白Caspase3、BAX、Bcl-2表达的影响 | 第41-42页 |
3.3 讨论 | 第42-46页 |
第四章 纳米二氧化硅对睾丸组织全基因组DNA甲基化的影响研究 | 第46-54页 |
4.1 材料与方法 | 第46-48页 |
4.1.1 主要试剂 | 第46页 |
4.1.2 主要仪器 | 第46-48页 |
4.1.4 Western blot测定甲基化相关蛋白表达方法 | 第48页 |
4.1.5 统计分析 | 第48页 |
4.2 结果 | 第48-51页 |
4.2.1 高效液相色谱对睾丸组织全基因组DNA甲基化水平的测定 | 第48-50页 |
4.2.3 nm-SiO_2染毒对大鼠睾丸组织DNA甲基化相关蛋白表达的影响 | 第50-51页 |
4.3 讨论 | 第51-54页 |
参考文献 | 第54-59页 |
附录1 综述 | 第59-67页 |
参考文献 | 第64-67页 |
附录2 攻读硕士学位期间发表的与学位相关的学术论文 | 第67-68页 |
致谢 | 第68-69页 |