| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 前言 | 第12-18页 |
| 第2章 材料与方法 | 第18-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-23页 |
| 2.1.1 实验细胞及其培养、冻存、复苏 | 第18-19页 |
| 2.1.2 PFOS配制及其分组 | 第19页 |
| 2.1.3 主要试剂和材料 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.5 主要试剂的配制 | 第21-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-33页 |
| 2.2.1 CCK8检测细胞存活率 | 第23页 |
| 2.2.2 AO/EB荧光染色检测细胞凋亡 | 第23-24页 |
| 2.2.3 流式细胞仪分析 | 第24页 |
| 2.2.4 氧化应激相关指标检测 | 第24-26页 |
| 2.2.5 总RNA提取（Roche法） | 第26-27页 |
| 2.2.6 RNA浓度检测 | 第27页 |
| 2.2.7 RNA完整性检测 | 第27-29页 |
| 2.2.8 蛋白编码基因实时定量PCR反应 | 第29-30页 |
| 2.2.9 实时定量PCR检测miRNA水平 | 第30-31页 |
| 2.2.10 Elisa检测上清液BDNF的表达水平 | 第31页 |
| 2.2.11 Western bolt检测蛋白及磷酸化蛋白表达水平 | 第31-33页 |
| 2.3 统计分析 | 第33-34页 |
| 第3章 结果 | 第34-46页 |
| 3.1 PFOS对SH-SY5Y细胞活性及细胞形态的影响 | 第34-35页 |
| 3.2 PFOS对SH-SY5Y细胞的凋亡作用 | 第35-37页 |
| 3.2.1 PFOS对SH-SY5Y细胞凋亡的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.2 PFOS对SH-SY5Y细胞凋亡率的影响 | 第36-37页 |
| 3.3 PFOS对SH-SY5Y细胞氧化损伤的影响 | 第37-39页 |
| 3.3.1 PFOS对GSH、SOD和MDA含量的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.2 PFOS对SH-SY5Y细胞ROS含量的影响 | 第38-39页 |
| 3.4 PFOS对SH-SY5Y细胞BDNF-ERK-CREB信号通路的影响 | 第39-42页 |
| 3.4.1 PFOS对BDNF基因表达水平的影响 | 第39页 |
| 3.4.2 PFOS对ERK1/2 表达水平的影响 | 第39-41页 |
| 3.4.3 PFOS对CREB和磷酸化CREB水平的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.4 PFOS对TrkB蛋白表达水平的影响 | 第42页 |
| 3.5 PFOS对DNMTs表达水平的影响 | 第42-43页 |
| 3.6 PFOS对SH-SY5Y细胞miR-16和miR-22水平的影响 | 第43-46页 |
| 3.6.1 生物信息学预测miR-16与BDNF-3，UTR的结合性 | 第43-44页 |
| 3.6.2 PFOS对miR-16和miR-22水平的影响 | 第44-46页 |
| 第4章 讨论 | 第46-52页 |
| 4.1 PFOS对SH-SY5Y细胞活性及凋亡的影响 | 第46-47页 |
| 4.2 PFOS对SH-SY5Y细胞BDNF-ERK-CREB信号通路的影响 | 第47-49页 |
| 4.3 PFOS对SH-SY5Y细胞氧化应激损伤和甲基化转移酶的影响 | 第49-52页 |
| 第5章 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-63页 |
| 文献综述 | 第63-79页 |
| 参考文献 | 第71-79页 |
| 主要英文缩略语（按英文字母排序） | 第79-81页 |
| 作者攻读学位期间的科研成果 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82页 |
