| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-14页 |
| 第2章 材料与方法 | 第14-25页 |
| 2.1 研究对象 | 第14页 |
| 2.2 实验分组 | 第14页 |
| 2.3 主要仪器及试剂 | 第14-16页 |
| 2.3.1 主要仪器 | 第14-15页 |
| 2.3.2 主要试剂 | 第15-16页 |
| 2.4 主要溶液配制 | 第16页 |
| 2.4.1 H&E染液配置 | 第16页 |
| 2.4.2 Trizol | 第16页 |
| 2.4.3 培养基的配置 | 第16页 |
| 2.4.4 MTT试剂的配制 | 第16页 |
| 2.5 实验方法 | 第16-25页 |
| 2.5.1 标本的收集与保存 | 第16-17页 |
| 2.5.2 前列腺癌组织与癌旁正常组织的鉴定及分离 | 第17页 |
| 2.5.3 Trizol法提取癌组织及癌旁正常组织的总RNA | 第17-18页 |
| 2.5.4 RNA浓度测定 | 第18页 |
| 2.5.5 引物设计 | 第18-19页 |
| 2.5.6 逆转录c DNA | 第19页 |
| 2.5.7 Real-time PCR检测lnc RNA RP1-142L7.5 的表达水平 | 第19-20页 |
| 2.5.8 细胞培养 | 第20-21页 |
| 2.5.9 细胞转染 | 第21-22页 |
| 2.5.10 划痕实验检测RP1-142L7.5 对DU145，22RV1细胞的影响 | 第22-23页 |
| 2.5.11 MTT法检测RP1-142L7.5 对DU145，22RV1细胞黏附的影响 | 第23页 |
| 2.5.12 Transwell检测RP1-142L7.5 对DU145，22RV1细胞侵袭能力的影响 | 第23-25页 |
| 第3章 结果 | 第25-42页 |
| 3.1 镜下组织学表现 | 第25-26页 |
| 3.1.1 正常前列腺上皮的镜下表现 | 第25-26页 |
| 3.1.2 PCa组织的病理表现 | 第26页 |
| 3.2 芯片结果 | 第26-35页 |
| 3.2.1 基因表达谱杂交图 | 第26-27页 |
| 3.2.2 基因表达谱散点图 | 第27-28页 |
| 3.2.3 基因表达差异 | 第28-29页 |
| 3.2.4 聚类分析 | 第29-30页 |
| 3.2.5 KEGG分析 | 第30-32页 |
| 3.2.6 以m RNA为入口的反向lnc RNA预测 | 第32-34页 |
| 3.2.7 选取基因 | 第34-35页 |
| 3.3 RT-PCR对RP1-142L7.5 大样本进行验证 | 第35-37页 |
| 3.4 si RNA干扰后RP1-142L7.5 的表达鉴定 | 第37页 |
| 3.5 si RNA干扰后对下游LAMA4基因的影响 | 第37-38页 |
| 3.6 Lnc RNA RP1-142L7.5 对细胞迁移功能的影响 | 第38-40页 |
| 3.7 Lnc RNA RP13-650J16.1 对细胞黏附功能的影响。 | 第40页 |
| 3.8 Lnc RNA RP13-650J16.1 对细胞体外侵袭能力的影响 | 第40-42页 |
| 第4章 讨论 | 第42-46页 |
| 4.1 LAMA4在肿瘤细胞中发挥的作用 | 第42-44页 |
| 4.2 lnc RNA与m RNA之间和蛋白表达的关系 | 第44-46页 |
| 第5章 结论 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-58页 |
| 综述 雄激素受体剪切变异体解析 | 第58-70页 |
| 参考文献 | 第66-70页 |
