| 摘要 | 第12-13页 |
| ABSTRACT | 第13页 |
| 第一章 绪论 | 第14-27页 |
| 1.1 药用真菌多糖的研究概况 | 第14-15页 |
| 1.2 药用真菌多糖生物活性的研究现状 | 第15-17页 |
| 1.2.1 药用真菌多糖的抗肿瘤作用 | 第16页 |
| 1.2.2 药用真菌多糖的抗氧化作用 | 第16-17页 |
| 1.2.3 药用真菌多糖的其他生物活性 | 第17页 |
| 1.3 九州虫草多糖的生物活性研究进展 | 第17-18页 |
| 1.3.1 九州虫草多糖的抗氧化作用 | 第17-18页 |
| 1.3.2 九州虫草多糖免疫调节作用 | 第18页 |
| 1.3.3 九州虫草多糖对DNA损伤的保护作用 | 第18页 |
| 1.4 多糖体内抗WSSV作用的研究进展 | 第18-23页 |
| 1.4.1 WSSV的研究现状 | 第18-21页 |
| 1.4.2 多糖抗WSSV作用的研究现状 | 第21-22页 |
| 1.4.3 多糖抗病毒机理 | 第22-23页 |
| 1.5 多糖对对虾免疫作用影响的研究进展 | 第23-26页 |
| 1.5.1 甲壳动物的免疫系统 | 第23-24页 |
| 1.5.1.1 细胞免疫 | 第23-24页 |
| 1.5.1.2 体液免疫 | 第24页 |
| 1.5.2 对虾的免疫作用 | 第24-25页 |
| 1.5.3 多糖对对虾免疫作用的影响 | 第25-26页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第26-27页 |
| 第二章 九州虫草多糖结构分析 | 第27-35页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第27页 |
| 2.1.1 九州虫草 | 第27页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 仪器 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-28页 |
| 2.2.1 多糖的提取纯化 | 第27-28页 |
| 2.2.2 分子量测定 | 第28页 |
| 2.2.3 红外光谱分析 | 第28页 |
| 2.2.4 单糖组成成分分析 | 第28页 |
| 2.2.5 ~1H NMR、~(13)C NMR核磁共振检测 | 第28页 |
| 2.3 实验结果 | 第28-34页 |
| 2.3.1 分子量测定 | 第28-29页 |
| 2.3.2 外光谱测定 | 第29-30页 |
| 2.3.3 单糖分析 | 第30-31页 |
| 2.3.4 ~1H NMR、~(13)C NMR核磁共振测定 | 第31-34页 |
| 2.4 小结与分析 | 第34-35页 |
| 第三章 九州虫草多糖抗对虾白斑病毒的初步研究 | 第35-44页 |
| 3.1 材料与试剂 | 第35页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第35页 |
| 3.1.2 病毒培养 | 第35页 |
| 3.1.3 试剂 | 第35页 |
| 3.1.4 仪器 | 第35页 |
| 3.2 溶液配制 | 第35-36页 |
| 3.3 实验方法 | 第36-38页 |
| 3.3.1 病毒纯化及滴度测定 | 第36页 |
| 3.3.1.1 病毒纯化 | 第36页 |
| 3.3.1.2 病毒滴度测定 | 第36页 |
| 3.3.2 不同时间点多糖的免疫刺激 | 第36-37页 |
| 3.3.3 粗多糖与纯多糖的免疫刺激 | 第37页 |
| 3.3.4 不同浓度多糖免疫刺激 | 第37页 |
| 3.3.5 蛋白提取 | 第37-38页 |
| 3.3.6 Western blot | 第38页 |
| 3.4 实验结果 | 第38-42页 |
| 3.4.1 不同时间点多糖免疫刺激作用 | 第38-40页 |
| 3.4.2 粗多糖、纯多糖的免疫刺激作用 | 第40-41页 |
| 3.4.3 不同浓度多糖的免疫刺激作用 | 第41-42页 |
| 3.5 小结与分析 | 第42-44页 |
| 第四章 九州虫草多糖对对虾抗WSSV的免疫活性作用 | 第44-56页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第44页 |
| 4.1.1 九州虫草多糖 | 第44页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第44页 |
| 4.1.3 病毒 | 第44页 |
| 4.1.4 试剂 | 第44页 |
| 4.1.5 仪器 | 第44页 |
| 4.2 溶液配制 | 第44-45页 |
| 4.3 实验方法 | 第45-48页 |
| 4.3.1 多糖免疫刺激 | 第45页 |
| 4.3.2 血细胞计数 | 第45页 |
| 4.3.3 SOD活性检测 | 第45-46页 |
| 4.3.3.1 粗酶液提取 | 第45页 |
| 4.3.3.2 测定步骤 | 第45-46页 |
| 4.3.4 超氧阴离子(Oxygen free radical,OFR)检测 | 第46-47页 |
| 4.3.4.1 超氧阴离子提取 | 第46页 |
| 4.3.4.2 测定步骤 | 第46-47页 |
| 4.3.5 多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO)活性检测 | 第47-48页 |
| 4.3.5.1 粗酶液提取 | 第47页 |
| 4.3.5.2 测定步骤 | 第47-48页 |
| 4.4 实验结果 | 第48-54页 |
| 4.4.1 血细胞数量 | 第48页 |
| 4.4.2 SOD酶活 | 第48-50页 |
| 4.4.2.1 血细胞中SOD酶活性 | 第48-49页 |
| 4.4.2.2 对虾鳃组织中的SOD酶活 | 第49-50页 |
| 4.4.3 OFR含量 | 第50-52页 |
| 4.4.3.1 血细胞中OFR的含量 | 第50-51页 |
| 4.4.3.2 对鳃组织中的OFR含量 | 第51-52页 |
| 4.4.4 PPO活性 | 第52-54页 |
| 4.4.4.1 血浆中的PPO活性 | 第52-53页 |
| 4.4.4.2 对鳃组织中的PPO活性 | 第53-54页 |
| 4.5 小结与分析 | 第54-56页 |
| 第五章 总结与展望 | 第56-58页 |
| 5.1 总结 | 第56页 |
| 5.2 展望 | 第56-58页 |
| 在读期间发表的文献 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第70页 |
