摘要 | 第3-6页 |
abstract | 第6-9页 |
中英文缩写词表 | 第12-13页 |
第1章 引言 | 第13-16页 |
第2章 材料与方法 | 第16-29页 |
2.1 材料 | 第16-19页 |
2.1.1 实验动物 | 第16页 |
2.1.2 饲料 | 第16页 |
2.1.3 主要试剂 | 第16-17页 |
2.1.4 主要试剂的配制 | 第17-18页 |
2.1.5 主要仪器设备 | 第18-19页 |
2.2 方法 | 第19-29页 |
2.2.1 建立小鼠2型糖尿病模型 | 第19-20页 |
2.2.2 Westernblot操作步骤 | 第20-22页 |
2.2.3 PCR操作步骤 | 第22-25页 |
2.2.4 氧化应激指标的检测 | 第25-27页 |
2.2.5 HE染色操作步骤 | 第27-28页 |
2.2.6 数据处理 | 第28-29页 |
第3章 实验结果 | 第29-51页 |
3.1 糖尿病小鼠脑内炎症、氧化应激及HSP22的表达情况 | 第29-37页 |
3.1.1 小鼠血糖水平 | 第29页 |
3.1.2 小鼠大脑组织HSP22蛋白的表达 | 第29-30页 |
3.1.3 小鼠大脑组织NLRP3炎症小体相关蛋白的表达 | 第30-32页 |
3.1.4 小鼠大脑组织TNF-α蛋白的表达 | 第32-33页 |
3.1.5 小鼠大脑组织IL-1β、IL-18mRNA的表达 | 第33-35页 |
3.1.6 小鼠大脑组织SOD、GSH-PX活性 | 第35-36页 |
3.1.7 小鼠大脑组织MDA含量 | 第36-37页 |
3.2 糖尿病小鼠大脑组织损伤情况 | 第37-39页 |
3.2.1 小鼠大脑组织Active-Caspase-3蛋白的表达 | 第37-38页 |
3.2.2 大脑组织病理切片 | 第38-39页 |
3.3 HSP22对糖尿病小鼠脑内炎症、氧化应激的影响 | 第39-48页 |
3.3.1 HSP22过表达转基因小鼠鉴定结果 | 第39页 |
3.3.2 小鼠血糖水平 | 第39-40页 |
3.3.3 小鼠大脑组织HSP22蛋白的表达 | 第40-41页 |
3.3.4 小鼠大脑组织NLRP3炎症小体相关蛋白的表达 | 第41-43页 |
3.3.5 小鼠大脑组织TNF-α蛋白的表达 | 第43-44页 |
3.3.6 小鼠大脑组织IL-1β、IL-18mRNA的表达 | 第44-46页 |
3.3.7 小鼠大脑组织SOD、GSH-PX活性 | 第46-47页 |
3.3.8 小鼠大脑组织MDA含量 | 第47-48页 |
3.4 HSP22改善糖尿病小鼠的大脑组织损伤 | 第48-51页 |
3.4.1 小鼠大脑组织Active-Caspase-3蛋白的表达 | 第48-49页 |
3.4.2 大脑组织病理切片 | 第49-51页 |
第4章 讨论 | 第51-54页 |
第5章 结论与展望 | 第54-55页 |
5.1 结论 | 第54页 |
5.2 不足之处与展望 | 第54-55页 |
致谢 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-60页 |
攻读学位期间的研究成果 | 第60-61页 |
综述 热休克蛋白22在心血管疾病中的价值 | 第61-68页 |
参考文献 | 第65-68页 |