摘要 | 第6-8页 |
abstract | 第8-10页 |
第1章 绪论 | 第14-19页 |
1.1 SE及其感染 | 第14-15页 |
1.2 表皮葡萄球菌的耐药 | 第15页 |
1.3 表皮葡萄球菌生物被膜形成 | 第15-17页 |
1.4 临床生物被膜相关感染的治疗 | 第17-18页 |
1.4.1 抑制细菌的黏附 | 第17页 |
1.4.2 破坏生物被膜 | 第17页 |
1.4.3 抗生素的应用 | 第17-18页 |
1.5 硝酸镓的抗生物被膜作用 | 第18-19页 |
第2章 表皮葡萄球菌生物被膜形成及耐药性分析 | 第19-38页 |
2.1 实验材料与方法 | 第20-25页 |
2.1.1 菌株 | 第20页 |
2.1.2 临床分离株的分子生物学鉴定 | 第20页 |
2.1.3 主要试剂 | 第20-21页 |
2.1.4 试剂的配置 | 第21-22页 |
2.1.5 主要仪器 | 第22-23页 |
2.1.6 细菌DNA提取 | 第23页 |
2.1.7 PCR检测mecA基因 | 第23页 |
2.1.8 生物被膜形成能力分析 | 第23页 |
2.1.9 PIA定性分析 | 第23-24页 |
2.1.10 生物被膜形态学特征分析 | 第24页 |
2.1.11 药敏试验 | 第24页 |
2.1.12 统计方法 | 第24-25页 |
2.2 实验结果 | 第25-33页 |
2.2.1 临床血液来源表皮葡萄球菌的分子鉴定 | 第25页 |
2.2.2 临床血液来源表皮葡萄球菌临床资料 | 第25页 |
2.2.3 生物被膜形成的半定量分析 | 第25-27页 |
2.2.4 PIA定性分析结果 | 第27-28页 |
2.2.5 生物被膜形态学特征 | 第28-29页 |
2.2.6 mecA耐药基因检测 | 第29页 |
2.2.7 药敏试验结果 | 第29-30页 |
2.2.8 mecA基因检测及耐药表型分析 | 第30-31页 |
2.2.9 MRSE与MSSE的耐药率的比较 | 第31页 |
2.2.10 生物被膜阳性与生物被膜阴性菌株耐药情况分析 | 第31-33页 |
2.3 讨论 | 第33-38页 |
第3章 血液来源表皮葡萄球菌的分子生物学特征 | 第38-52页 |
3.1 实验材料与方法 | 第40-43页 |
3.1.1 菌株 | 第40页 |
3.1.2 主要试剂 | 第40页 |
3.1.3 主要仪器 | 第40页 |
3.1.4 引物系列 | 第40-42页 |
3.1.5 SCCmec分型 | 第42-43页 |
3.1.6 agr基因多态性分析 | 第43页 |
3.1.7 生物被膜相关基因分析 | 第43页 |
3.2 实验结果 | 第43-48页 |
3.2.1 75株MRSE的SCCmec分型结果 | 第43-45页 |
3.2.2 表皮葡萄球菌agr分型结果 | 第45页 |
3.2.3 生物被膜相关基因的检测 | 第45-46页 |
3.2.4 表皮葡萄球菌的分子特征 | 第46页 |
3.2.5 表皮葡萄球菌的分子特征与耐药表型分析 | 第46-47页 |
3.2.6 生物被膜形成与相关基因的关系 | 第47-48页 |
3.2.7 MRSE的生物被膜形成能力分析 | 第48页 |
3.3 讨论 | 第48-52页 |
第4章 硝酸镓抑制PIA依赖的表皮葡萄球菌生物被膜形成 | 第52-62页 |
4.1 实验材料与方法 | 第53-56页 |
4.1.1 菌株 | 第53-54页 |
4.1.2 试剂 | 第54页 |
4.1.3 试剂的配制 | 第54页 |
4.1.4 主要仪器 | 第54页 |
4.1.5 硝酸镓对表皮葡萄球菌最低抑菌浓度的检测 | 第54-55页 |
4.1.6 硝酸镓对PIA依赖的生物被膜的作用 | 第55页 |
4.1.7 硝酸镓抑制生物被膜形态学分析 | 第55-56页 |
4.1.8 统计学分析 | 第56页 |
4.2 结果 | 第56-59页 |
4.2.1 研究菌株的生物被膜形成测定 | 第56页 |
4.2.2 硝酸镓对表皮葡萄球菌的MIC结果 | 第56-57页 |
4.2.3 硝酸镓对PIA依赖生物被膜形成的抑制作用 | 第57-58页 |
4.2.4 硝酸镓抑制PIA依赖的生物被膜形成的CLSM图片 | 第58-59页 |
4.3 讨论 | 第59-62页 |
全文总结 | 第62-63页 |
致谢 | 第63-64页 |
参考文献 | 第64-72页 |
附录1 | 第72-74页 |
攻读硕士学位期间发表的论文及科研成果 | 第74页 |