| 英文缩略词 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 前言 | 第17-27页 |
| 1 胰岛素抵抗的定义与危害 | 第17-18页 |
| 1.1 胰岛素抵抗的产生及危害 | 第17-18页 |
| 1.2 胰岛素抵抗产生的分子机制 | 第18页 |
| 2 炎症与胰岛素抵抗 | 第18-23页 |
| 2.1 炎症在胰岛素抵抗患者的临床表现 | 第18-19页 |
| 2.2 脂肪组织与炎症 | 第19-20页 |
| 2.2.1 脂肪组织分泌调节炎症的细胞因子 | 第19-20页 |
| 2.2.2 脂肪组织的炎症细胞浸润 | 第20页 |
| 2.3 炎症因子与胰岛素抵抗 | 第20-22页 |
| 2.3.1 TNF-α | 第20-21页 |
| 2.3.2 IL-6 | 第21页 |
| 2.3.3 CRP | 第21页 |
| 2.3.4 脂联素 | 第21-22页 |
| 2.3.5 IL-10 | 第22页 |
| 2.4 与胰岛素抵抗相关联的炎症作用途径 | 第22-23页 |
| 2.4.1 IKK/NF-κB通路 | 第22-23页 |
| 2.4.2 JNK通路 | 第23页 |
| 2.4.3 iNOS/NO通路 | 第23页 |
| 2.4.4 SOCS信号通路 | 第23页 |
| 3 虾青素及虾青素酯的研究进展 | 第23-24页 |
| 3.1 结构及性质 | 第23-24页 |
| 3.2 生物活性研究 | 第24页 |
| 4 立题依据和研究意义 | 第24-27页 |
| 第一章 虾青素酯的毒理学安全性评价 | 第27-43页 |
| 第一节 虾青素酯对小鼠的急性毒性实验 | 第27-30页 |
| 1 实验材料 | 第27-28页 |
| 1.1 虾青素酯 | 第27页 |
| 1.2 实验动物 | 第27-28页 |
| 1.3 主要仪器 | 第28页 |
| 2 实验方法 | 第28页 |
| 2.1 动物分组及实验设计 | 第28页 |
| 2.2 检测指标 | 第28页 |
| 2.3 统计学分析 | 第28页 |
| 3 实验结果 | 第28-30页 |
| 3.1 小鼠一般状态观察 | 第28-29页 |
| 3.2 最大耐受量的确定 | 第29页 |
| 3.3 体重及摄食量变化 | 第29-30页 |
| 3.4 对脏体比的影响 | 第30页 |
| 第二节 虾青素酯的遗传毒性实验 | 第30-35页 |
| 1 实验材料 | 第31页 |
| 1.1 材料 | 第31页 |
| 1.2 实验动物 | 第31页 |
| 1.3 主要仪器 | 第31页 |
| 1.4 主要试剂 | 第31页 |
| 2 实验方法 | 第31-33页 |
| 2.1 细菌回复突变实验(Ames实验) | 第31-32页 |
| 2.2 小鼠骨髓微核实验 | 第32-33页 |
| 2.3 小鼠精子畸形实验 | 第33页 |
| 2.4 统计学分析 | 第33页 |
| 3 实验结果 | 第33-35页 |
| 3.1 虾青素酯对细菌回复突变实验的影响 | 第33-34页 |
| 3.2 虾青素酯对骨髓微核的影响 | 第34页 |
| 3.3 虾青素酯对精子畸形的影响 | 第34-35页 |
| 第三节 大鼠30天喂养实验研究 | 第35-43页 |
| 1 实验材料 | 第35-36页 |
| 1.1 虾青素酯 | 第35页 |
| 1.2 实验动物 | 第35页 |
| 1.3 主要试剂 | 第35-36页 |
| 1.4 实验仪器 | 第36页 |
| 2 实验方法 | 第36-37页 |
| 2.1 动物分组及实验设计 | 第36页 |
| 2.2 实验指标的测定 | 第36-37页 |
| 2.2.1 外周血象的测定 | 第36页 |
| 2.2.2 血脂的测定 | 第36-37页 |
| 2.2.3 肝功能指标的测定 | 第37页 |
| 2.2.4 肾功能指标测定 | 第37页 |
| 2.2.5 心肌损伤指标测定 | 第37页 |
| 2.3 数据统计与分析 | 第37页 |
| 3 结果 | 第37-41页 |
| 3.1 对大鼠的一般行为状态影响 | 第37页 |
| 3.2 对大鼠体重增长和食物利用率的影响 | 第37-38页 |
| 3.3 对大鼠外周血象的影响 | 第38-39页 |
| 3.4 对血脂的影响 | 第39页 |
| 3.5 对大鼠肝功能的影响 | 第39-40页 |
| 3.6 对大鼠肾功能的影响 | 第40页 |
| 3.7 对大鼠心肌损伤的影响 | 第40-41页 |
| 4 小结 | 第41-42页 |
| 5 讨论 | 第42-43页 |
| 第二章 虾青素酯改善胰岛素抵抗模型小鼠的慢性炎症 | 第43-58页 |
| 第一节 虾青素酯改善模型小鼠的胰岛素抵抗 | 第43-49页 |
| 1 材料与方法 | 第43-44页 |
| 1.1 虾青素酯 | 第43页 |
| 1.2 实验动物 | 第43页 |
| 1.3 主要试剂 | 第43-44页 |
| 1.4 实验仪器 | 第44页 |
| 2 实验方法 | 第44-46页 |
| 2.1 动物实验及分组 | 第44-45页 |
| 2.2 空腹血糖及糖耐量的测定 | 第45页 |
| 2.3 血清胰岛素含量的测定 | 第45-46页 |
| 2.4 统计学分析 | 第46页 |
| 3 实验结果 | 第46-49页 |
| 3.1 虾青素酯降低小鼠体重和脂肪积累 | 第46-47页 |
| 3.2 虾青素酯改善模型小鼠葡萄糖耐受量 | 第47-48页 |
| 3.3 虾青素酯改善小鼠的胰岛素抵抗 | 第48-49页 |
| 第二节 虾青素酯调节模型小鼠的炎症因子水平 | 第49-58页 |
| 1 实验材料 | 第49-50页 |
| 1.1 实验材料和动物 | 第49页 |
| 1.2 实验试剂 | 第49-50页 |
| 1.3 主要仪器 | 第50页 |
| 2 实验方法 | 第50-51页 |
| 2.1 动物实验与分组 | 第50页 |
| 2.2 脂肪组织切片及HE染色 | 第50页 |
| 2.3 血清炎症因子含量的检测 | 第50页 |
| 2.4 q-RT-PCR法检测模型小鼠炎症因子mRNA的表达 | 第50-51页 |
| 2.5 统计学分析 | 第51页 |
| 3 实验结果 | 第51-57页 |
| 3.1 小鼠脂肪组织切片染色结果 | 第51-52页 |
| 3.2 虾青素酯对模型小鼠血清促炎症因子水平的影响 | 第52-54页 |
| 3.2.1 虾青素酯降低模型小鼠血清FFA含量 | 第52页 |
| 3.2.2 虾青素酯降低模型小鼠血清ROS水平 | 第52-53页 |
| 3.2.3 虾青素酯降低模型小鼠血清NO水平 | 第53页 |
| 3.2.4 虾青素酯降低模型小鼠血清中TNF-α含量 | 第53页 |
| 3.2.5 虾青素酯降低模型小鼠血清IL-6水平 | 第53-54页 |
| 3.2.6 虾青素酯降低模型小鼠血清CRP水平 | 第54页 |
| 3.2.7 虾青素酯降低模型小鼠血清IL-1β水平 | 第54页 |
| 3.3 虾青素酯对模型小鼠血清抗炎性因子水平的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.1 虾青素酯增加模型小鼠血清中脂联素水平 | 第54页 |
| 3.3.2 虾青素酯增加模型小鼠血清中IL-10含量 | 第54-55页 |
| 3.4 虾青素酯抑制小鼠促炎症因子TNF-α及IL-6基因mRNA表达的影响 | 第55-56页 |
| 3.5 虾青素酯促进小鼠抗炎症因子PPAR-γ、IL-10及脂联素mRNA的表达 | 第56-57页 |
| 4 小结 | 第57-58页 |
| 第三章 虾青素酯改善模型小鼠慢性炎症的机制研究 | 第58-65页 |
| 1 实验材料 | 第58-59页 |
| 1.1 虾青素酯及实验动物 | 第58页 |
| 1.2 实验试剂 | 第58页 |
| 1.3 实验仪器 | 第58-59页 |
| 2 实验方法 | 第59-60页 |
| 2.1 动物实验与分组 | 第59页 |
| 2.2 qRT-PCR分析 | 第59页 |
| 2.3 统计学分析 | 第59-60页 |
| 3 实验结果 | 第60-62页 |
| 3.1 虾青素酯对模型小鼠NF-κB通路关键基因mRNA表达的影响… | 第60-61页 |
| 3.2 虾青素酯对模型小鼠JNK mRNA表达的影响 | 第61页 |
| 3.3 虾青素酯对模型小鼠iNOS mRNA表达的影响 | 第61页 |
| 3.4 虾青素酯对模型小鼠SOCS3 mRNA表达的影响 | 第61页 |
| 3.5 虾青素酯对模型小鼠PI3K-PKB通路关键基因mRNA表达的影响 | 第61-62页 |
| 4 小结 | 第62-63页 |
| 5 讨论 | 第63-65页 |
| 结论 | 第65-66页 |
| 本论文的特色及创新之处 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简历 | 第76-77页 |
| 硕士期间学术成果 | 第77页 |
| 一、学术论文 | 第77页 |
| 二、获奖情况 | 第77页 |
