| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第15-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-31页 |
| 1.1 哮喘概述与发病机制研究 | 第17-20页 |
| 1.2 蛋白质组学分析方法的概况和发展 | 第20-22页 |
| 1.3 哮喘相关蛋白质组学研究进展 | 第22-27页 |
| 1.3.1 诱导痰蛋白质组分析 | 第22-23页 |
| 1.3.2 支气管肺泡灌洗液蛋白质组分析 | 第23-24页 |
| 1.3.3 呼出气冷凝液蛋白质组分析 | 第24页 |
| 1.3.4 血浆蛋白组分析 | 第24-25页 |
| 1.3.5 鼻腔灌洗液蛋白质组分析 | 第25-26页 |
| 1.3.6 气道平滑肌蛋白组分析 | 第26-27页 |
| 1.3.7 哮喘动物模型蛋白组学研究 | 第27页 |
| 1.4 研究背景、意义和内容 | 第27-31页 |
| 1.4.1 研究背景 | 第27-28页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第28-30页 |
| 1.4.3 研究意义 | 第30-31页 |
| 第二章 白介素-13 诱导人支气管平滑肌细胞培养、细胞体积及增值检测 | 第31-44页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 实验试剂与仪器 | 第32-34页 |
| 2.2.1 细胞系来源 | 第32页 |
| 2.2.2 实验材料 | 第32-33页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第33页 |
| 2.2.4 相关溶液的配制 | 第33-34页 |
| 2.3 实验方法 | 第34-38页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第34-35页 |
| 2.3.2 IL-13 诱导HBSMC细胞培养及给R-Terbutaline处理 | 第35-36页 |
| 2.3.3 细胞面积测定 | 第36-37页 |
| 2.3.4 细胞增殖 | 第37-38页 |
| 2.4 实验结果 | 第38-41页 |
| 2.4.1 细胞面积测定 | 第38-40页 |
| 2.4.2 细胞增殖测定 | 第40-41页 |
| 2.5 讨论 | 第41-42页 |
| 2.6 本章小结 | 第42-44页 |
| 第三章 白介素-13 诱导人支气管平滑肌细胞蛋白提取与非变性 2-DE分离 | 第44-74页 |
| 3.1 引言 | 第44-46页 |
| 3.2 实验试剂与仪器 | 第46-51页 |
| 3.2.1 细胞系来源 | 第46-47页 |
| 3.2.2 实验材料 | 第47-48页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第48-49页 |
| 3.2.4 相关溶液的配制 | 第49-51页 |
| 3.3 实验方法 | 第51-58页 |
| 3.3.1 IL-13 诱导及给R-Terbutaline处理组细胞培养 | 第51-53页 |
| 3.3.2 HBSMC可溶性蛋白质提取 | 第53-54页 |
| 3.3.3 HBMSC可溶性蛋白非变性二维凝胶的制备 | 第54-56页 |
| 3.3.4 HBMSC可溶性蛋白非变性二维凝胶电泳 | 第56-58页 |
| 3.4 实验结果 | 第58-72页 |
| 3.4.1 提取的细胞可溶性蛋白浓度 | 第58-59页 |
| 3.4.2 IL-13 诱导及给R-Terbutaline处理组细胞可溶性蛋白非变性二维电泳图谱 | 第59-66页 |
| 3.4.3 凝胶选取及切胶点选取 | 第66-72页 |
| 3.5 讨论 | 第72-73页 |
| 3.6 本章小结 | 第73-74页 |
| 第四章 HBSMC非变性二维电泳选点切胶-胶内酶解-定量LC-MS/MS组学分析 | 第74-137页 |
| 4.1 引言 | 第74-75页 |
| 4.2 实验试剂与仪器 | 第75-78页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第75页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第75-76页 |
| 4.2.3 相关溶液的配制 | 第76-78页 |
| 4.3 实验方法 | 第78-82页 |
| 4.3.1 凝胶切取 | 第78-79页 |
| 4.3.2 胶内酶解 | 第79-80页 |
| 4.3.3 纳升级超高效液相色谱分离 | 第80-81页 |
| 4.3.4 质谱检测 | 第81页 |
| 4.3.5 数据处理及蛋白质的定性定量分析 | 第81-82页 |
| 4.4 实验结果 | 第82-133页 |
| 4.4.1 各组别样品nano-UPLC-MSE检测到的蛋白质种类、含量结果 | 第82-91页 |
| 4.4.2 各组别可溶性蛋白质的差异表达 | 第91-110页 |
| 4.4.3 差异蛋白质功能及其相关的信号通路分析 | 第110-133页 |
| 4.5 讨论 | 第133-135页 |
| 4.6 本章小结 | 第135-137页 |
| 第五章 基于非变性微型 2DE和定量LC-MS/MS的大鼠血浆蛋白质全局谱图绘制 | 第137-155页 |
| 5.1 引言 | 第137-138页 |
| 5.2 实验试剂与仪器 | 第138-140页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第138-139页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第139页 |
| 5.2.3 实验动物 | 第139-140页 |
| 5.2.4 相关溶液配制 | 第140页 |
| 5.3 实验方法 | 第140-145页 |
| 5.3.1 大鼠血浆样品准备 | 第140页 |
| 5.3.2 大鼠血浆样品的非变性微型二维电泳 | 第140-141页 |
| 5.3.3 蛋白质凝胶点编号 | 第141-142页 |
| 5.3.4 胶内酶解 | 第142-143页 |
| 5.3.5 酶解肽段的液相分离 | 第143-144页 |
| 5.3.6 质谱分析 | 第144页 |
| 5.3.7 数据处理、蛋白质鉴定和定量 | 第144-145页 |
| 5.4 实验结果 | 第145-153页 |
| 5.4.1 大鼠血浆参考胶CBB-染色蛋白质点的全局分析 | 第145-146页 |
| 5.4.2 大鼠血浆蛋白质非变性蛋白质谱图的重构 | 第146-148页 |
| 5.4.3 用相关性分析对非变性蛋白质谱图的相互作用预测 | 第148-153页 |
| 5.5 讨论 | 第153-154页 |
| 5.6 本章小结 | 第154-155页 |
| 结论与展望 | 第155-158页 |
| 结论 | 第155-156页 |
| 创新之处 | 第156-157页 |
| 展望 | 第157-158页 |
| 参考文献 | 第158-174页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第174-175页 |
| 致谢 | 第175-176页 |
| 附件 | 第176页 |
