摘要 | 第3-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
1 前言 | 第12-13页 |
2 材料与方法 | 第13-19页 |
2.1 实验材料 | 第13-15页 |
2.1.1 实验动物 | 第13页 |
2.1.2 实验仪器与试剂 | 第13-14页 |
2.1.3 溶液配制 | 第14-15页 |
2.2 大鼠胰腺腺泡细胞分离和培养 | 第15-16页 |
2.2.1 取材方法 | 第15页 |
2.2.2 组织消化 | 第15页 |
2.2.3 离心和重悬细胞 | 第15-16页 |
2.2.4 细胞培养 | 第16页 |
2.2.5 细胞的处理 | 第16页 |
2.3 台盼兰试验检测细胞活力 | 第16页 |
2.4 细胞上清液的收集和检测 | 第16-17页 |
2.4.1 测定细胞的淀粉酶(AMY)分泌率 | 第16-17页 |
2.4.2 测定细胞的乳酸脱氢酶(LDH)漏出率 | 第17页 |
2.5 免疫细胞化学检测胰腺腺泡细胞COX-2 和NF-κB 表达 | 第17-18页 |
2.5.1 制片与固定 | 第17页 |
2.5.2 免疫细胞化学过程 | 第17-18页 |
2.6 半定量 RT-PCR 检测胰腺腺泡细胞中 COX-2 和 NF-κB | 第18-19页 |
2.6.1 细胞总RNA 提取 | 第18页 |
2.6.2 逆转录cDNA | 第18-19页 |
2.6.3 PCR 引物序列 | 第19页 |
2.6.4 PCR反应体系 | 第19页 |
3 统计学方法 | 第19-20页 |
4 结果 | 第20-28页 |
4.1 相差显微镜下观察腺泡细胞的形态 | 第20页 |
4.2 大鼠胰腺腺泡细胞活力的变化 | 第20-21页 |
4.3 淀粉酶分泌率、乳酸脱氢酶漏出率的变化 | 第21-23页 |
4.4 免疫组化检测胰腺腺泡细胞COX-2 和NF-κB 表达的结果 | 第23-24页 |
4.5 胰腺腺泡细胞COX-2 和NF-κB mRNA 表达的变化 | 第24-28页 |
5 讨论 | 第28-32页 |
结论 | 第32-33页 |
参考文献 | 第33-36页 |
附录一 环氧合酶-2 与急性胰腺炎(综述) | 第36-43页 |
附录二 硕士在读期间发表的论文及参编专著目录 | 第43-44页 |
附录三 致谢 | 第44-47页 |
上海交通大学学位论文答辩决议书 | 第47页 |