| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 引言 | 第12-24页 |
| 1.1 糖尿病性白内障的发病机制 | 第12-14页 |
| 1.1.1 氧化应激学说与糖尿病性白内障的关系 | 第12-13页 |
| 1.1.2 晶状体蛋白的糖基化学说与糖尿病性白内障的关系 | 第13-14页 |
| 1.1.3 渗透压或多元醇代谢异常学说 | 第14页 |
| 1.2 晶状体上皮细胞与白内障的关系 | 第14-15页 |
| 1.2.1 细胞学基础 | 第14-15页 |
| 1.2.2 LEC凋亡和增殖与白内障形成的关系 | 第15页 |
| 1.3 糖尿病性白内障的研究现状 | 第15-17页 |
| 1.3.1 抗氧化酶系统与糖尿病性白内障的关系 | 第15-16页 |
| 1.3.2 活性氧与糖尿病性白内障的关系 | 第16页 |
| 1.3.3 AGEs与糖尿病性白内障的关系 | 第16-17页 |
| 1.3.4 NF-κB与糖尿病性白内障的关系 | 第17页 |
| 1.4 糖尿病性白内障流行病学与治疗的新进展 | 第17-20页 |
| 1.4.1 糖尿病白内障发病率的临床研究 | 第18-19页 |
| 1.4.2 糖尿病性白内障的治疗 | 第19-20页 |
| 1.4.3 糖尿病性白内障的手术治疗 | 第20页 |
| 1.5 茶叶抗氧化作用的研究概况 | 第20-23页 |
| 1.5.1 茶多酚 | 第21-22页 |
| 1.5.2 茶色素 | 第22-23页 |
| 1.6 研究内容 | 第23-24页 |
| 第二章 TFDG、EGCG、EGC对高糖诱导的人晶状体上皮细胞的影响 | 第24-29页 |
| 2.1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第24页 |
| 2.1.2 细胞株和茶叶功能成分 | 第24页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.4 主要溶液的配制 | 第25页 |
| 2.1.5 HLEC细胞复苏、培养及传代 | 第25页 |
| 2.1.6 高糖(HG)氧化损伤模型的建立 | 第25-26页 |
| 2.1.7 TFDG、EGCG、EGC对高糖诱导的HLEC细胞存活率的影响 | 第26页 |
| 2.2 结果分析 | 第26-29页 |
| 2.2.1 葡萄糖处理后HLECs的形态变化 | 第26页 |
| 2.2.2 不同浓度的葡萄糖和时间对HLECs存活率的影响 | 第26-27页 |
| 2.2.3 不同浓度的TFDG、EGCG、EGC对高糖诱导的HLECs存活率的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.4 小结与讨论 | 第28-29页 |
| 第三章 TFDG、EGCG、EGC对高糖诱导的人晶状体上皮细胞氧化损伤的影响 | 第29-39页 |
| 3.1 材料与方法 | 第29-33页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第29页 |
| 3.1.2 细胞株和主要试剂 | 第29-30页 |
| 3.1.3 HLEC细胞复苏、培养及传代 | 第30页 |
| 3.1.4 细胞分组 | 第30页 |
| 3.1.5 人晶状体上皮细胞内SOD、CAT、GSH-Px、MDA的活性和含量检测 | 第30页 |
| 3.1.6 HLEC细胞中MnSOD mRNA的表达 | 第30-32页 |
| 3.1.7 统计学处理 | 第32-33页 |
| 3.2 结果 | 第33-37页 |
| 3.2.1 HLEC细胞中SOD活性的变化 | 第33页 |
| 3.2.2 HLEC细胞中CAT活性的变化 | 第33-34页 |
| 3.2.3 HLEC细胞中GSH-Px活性的变化 | 第34-35页 |
| 3.2.4 HLEC细胞中MDA含量的变化 | 第35-36页 |
| 3.2.5 HLEC细胞中MnSOD mRNA的表达 | 第36-37页 |
| 3.3 讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 TFDG、EGCG、EGC对高糖诱导的人晶状体上皮细胞iNOS的影响 | 第39-45页 |
| 4.1 材料与方法 | 第39-41页 |
| 4.1.1 主要仪器 | 第39页 |
| 4.1.2 细胞株和主要试剂 | 第39-40页 |
| 4.1.3 HLEC细胞复苏、培养及传代 | 第40页 |
| 4.1.4 细胞分组 | 第40页 |
| 4.1.5 HLECs内NOS的活性和NO含量的测定 | 第40页 |
| 4.1.6 HLECs内RNA抽提及qPCR检测iNOS、NF-KB mRNA的表达 | 第40-41页 |
| 4.1.7 统计学处理 | 第41页 |
| 4.2 结果 | 第41-43页 |
| 4.2.1 TFDG、EGCG、EGC对高糖诱导的HLECs内iNOS活性和NO含量的变化 | 第41-42页 |
| 4.2.2 TFDG、EGCG、EGC对高糖诱导的HLECs中iNOS、NF-κB mRNA表达的影响 | 第42-43页 |
| 4.3 小结与讨论 | 第43-45页 |
| 第五章 TFDG、EGCG、EGC对高糖诱导的人晶状体上皮细胞Bcl-2,Bax,Caspase-3 mRNA表达的影响 | 第45-49页 |
| 5.1 材料与方法 | 第45-46页 |
| 5.1.1 主要仪器 | 第45页 |
| 5.1.2 细胞株和主要试剂 | 第45页 |
| 5.1.3 HLEC细胞复苏、培养及传代 | 第45页 |
| 5.1.4 细胞分组 | 第45-46页 |
| 5.1.5 收集各组细胞总RNA的提取 | 第46页 |
| 5.1.6 数据处理 | 第46页 |
| 5.2 结果 | 第46-47页 |
| 5.3 小结与讨论 | 第47-49页 |
| 全文总结 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简介 | 第63页 |
