| 摘要 | 第2-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 材料与方法 | 第11-22页 |
| 1 实验试剂与仪器 | 第11-13页 |
| 1.1 主要实验试剂和耗材 | 第11-12页 |
| 1.2 主要实验仪器设备 | 第12页 |
| 1.3 主要溶液配制 | 第12-13页 |
| 2 实验动物及分组 | 第13-14页 |
| 2.1 实验动物 | 第13页 |
| 2.2 实验分组 | 第13页 |
| 2.3 模型制备 | 第13-14页 |
| 2.4 Bo NT/A注射 | 第14页 |
| 3机械疼撤足阈值测试 | 第14页 |
| 4热痛阈潜伏期测试 | 第14-15页 |
| 5红外热成像测试大鼠踝关节体表温度 | 第15页 |
| 6 采用蛋白免疫印迹Western Blotting(WB)法测定TRPV1的蛋白表达水平 | 第15-16页 |
| 6.1 蛋白提取和定量检测 | 第15页 |
| 6.2 聚丙烯酰胺凝胶电泳步骤 | 第15-16页 |
| 7 免疫荧光组织化学检测DRG中TRPV1/CGRP阳性细胞数百分比变化和TRPV1和cl-SNAP-25 共定位阳性细胞情况 | 第16-17页 |
| 7.1 玻片的制备 | 第16页 |
| 7.2 组织样品处理 | 第16页 |
| 7.3 大鼠背根节冰冻切片 | 第16-17页 |
| 7.4 双标免疫荧光法标记大鼠腰段L5DRG中TRPV1和cl-SNAP-25 共定位阳性细胞；TRPV1和CGRP共定位阳性细胞 | 第17页 |
| 8 踝关节HE染色 | 第17-18页 |
| 9 RT-PCR | 第18-20页 |
| 9.1 大鼠L4-L5DRG组织的解剖 | 第18页 |
| 9.2 Trizol方法抽提总RNA | 第18-19页 |
| 9.3 逆转录（RT） | 第19页 |
| 9.4 引物设计 | 第19-20页 |
| 9.5 RT-PCR | 第20页 |
| 9.6 PCR扩增结果处理 | 第20页 |
| 10 统计学方法 | 第20-22页 |
| 结果 | 第22-31页 |
| 1 CFA对机械痛撤足阈值和热痛阈潜伏期的影响 | 第22页 |
| 2 CFA对TRPV1蛋白表达水平的影响 | 第22-23页 |
| 3 Bo NT/A对机械痛撤足阈值和热痛阈潜伏期明显改善 | 第23-24页 |
| 4 Bo NT/A对TRPV1蛋白表达水平的影响 | 第24-25页 |
| 5 红外线结果 | 第25-26页 |
| 6 HE染色结果 | 第26-27页 |
| 7 BoNT/A对DRG中TRPV1阳性细胞数的影响 | 第27-29页 |
| 8 关节腔注射BoNT/A 5天后DRG中TRPV1和cl-SNAP-25双标免疫荧光染色结果 | 第29-30页 |
| 9 RT-PCR结果 | 第30-31页 |
| 讨论 | 第31-35页 |
| 结论 | 第35-36页 |
| 参考文献 | 第36-39页 |
| 综述 | 第39-46页 |
| 综述参考文献 | 第43-46页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第46-47页 |
| 缩略词表 | 第47-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
