缩略语表 | 第5-7页 |
中文摘要 | 第7-10页 |
英文摘要 | 第10-13页 |
前言 | 第14-16页 |
文献回顾 | 第16-27页 |
第一部分 ROS下调Nrf2(61 kD)、NRF-1/mtTFA和Nrf2(100 kD)启动氧化应激在高脂诱导IR中的作用机制 | 第27-53页 |
1 材料 | 第27-29页 |
1.1 实验动物 | 第27页 |
1.2 主要试剂 | 第27-28页 |
1.3 主要仪器 | 第28-29页 |
2 方法 | 第29-32页 |
2.1 HF饲料配制 | 第29页 |
2.2 动物分组 | 第29页 |
2.3 空腹血糖测定 | 第29页 |
2.4 IPGTT和IPITT | 第29页 |
2.5 空腹血清胰岛素测定及HOMA-IR指数计算 | 第29页 |
2.6 油红O染色 | 第29-30页 |
2.7 天狼猩红-苦味酸染色 | 第30页 |
2.8 活性氧检测 | 第30页 |
2.9 肝组织丙二醛(MDA)含量检测 | 第30页 |
2.10 肝组织耗氧量测定 | 第30页 |
2.11 肝组织亚细胞结构观察 | 第30-31页 |
2.12 Western Blot | 第31-32页 |
2.13 统计学分析 | 第32页 |
3 结果 | 第32-46页 |
3.1 高脂饮食诱导胰岛素抵抗的发生和发展 | 第32-35页 |
3.2 高脂饮食诱导胰岛素抵抗过程中的肝病理改变 | 第35-38页 |
3.3 高脂饮食诱导胰岛素抵抗过程中的肝氧化应激改变 | 第38-40页 |
3.4 高脂饮食诱导胰岛素抵抗过程中的肝线粒体改变 | 第40-43页 |
3.5 高脂饮食诱导胰岛素抵抗过程中的肝抗氧化酶改变 | 第43-44页 |
3.6 Nrf2、NRF-1、mtTFA在高脂饮食诱导的胰岛素抵抗发生发展中的动态变化 | 第44-46页 |
4 讨论 | 第46-53页 |
第二部分 db/db鼠体内氧化应激与Nrf2(61 kD)、NRF-1/mt TFA的关联研究 | 第53-61页 |
1 材料 | 第53-54页 |
1.1 实验动物 | 第53页 |
1.2 主要试剂 | 第53页 |
1.3 主要仪器 | 第53-54页 |
2 方法 | 第54-55页 |
2.1 动物分组 | 第54页 |
2.2 血糖测定、血清胰岛素含量测定、HOMA-IR计算 | 第54页 |
2.3 油红O染色 | 第54页 |
2.4 MDA、T-GSH/GSSG、CAT、SOD、GSH-Px、TG测定 | 第54-55页 |
2.5 Western Blot | 第55页 |
2.6 统计学分析 | 第55页 |
3 结果 | 第55-59页 |
3.1 db/db鼠发生胰岛素抵抗 | 第55-56页 |
3.2 db/db鼠发生肝脏脂肪变 | 第56-57页 |
3.3 db/db鼠肝脏氧化应激水平升高 | 第57-58页 |
3.4 db/db鼠肝脏抗氧化酶活性改变 | 第58页 |
3.5 db/db鼠肝脏抗氧化酶表达量改变 | 第58-59页 |
3.6 db/db鼠肝脏Nrf2、NRF-1、mtTFA表达改变 | 第59页 |
4 讨论 | 第59-61页 |
第三部分 Nrf2(100 kD)上调抗氧化酶和与NRF-1/mt TFA的关联性研究 | 第61-66页 |
1 材料 | 第61-62页 |
1.1 细胞系 | 第61页 |
1.2 主要试剂 | 第61页 |
1.3 主要仪器 | 第61-62页 |
2 方法 | 第62-63页 |
2.1 细胞培养 | 第62页 |
2.2 质粒扩增 | 第62页 |
2.3 质粒提取 | 第62-63页 |
2.4 质粒转染 | 第63页 |
2.5 提取细胞蛋白 | 第63页 |
2.6 Western Blot | 第63页 |
2.7 统计学分析 | 第63页 |
3 结果 | 第63-65页 |
3.1 转染pCDNA3-Myc3-Nrf2质粒过表达Nrf2引起蛋白表达改变 | 第63-64页 |
3.2 转染pCDNA3-Myc3-Nrf2质粒过表达Nrf2引起抗氧化酶表达改变 | 第64-65页 |
4 讨论 | 第65-66页 |
小结 | 第66-68页 |
参考文献 | 第68-74页 |
个人简历和研究成果 | 第74-76页 |
致谢 | 第76页 |