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ROS下调Nrf2(61 kD)、NRF-1/mtTFA和Nrf2(100 kD)启动氧化应激共同诱导IR的研究

缩略语表第5-7页
中文摘要第7-10页
英文摘要第10-13页
前言第14-16页
文献回顾第16-27页
第一部分 ROS下调Nrf2(61 kD)、NRF-1/mtTFA和Nrf2(100 kD)启动氧化应激在高脂诱导IR中的作用机制第27-53页
    1 材料第27-29页
        1.1 实验动物第27页
        1.2 主要试剂第27-28页
        1.3 主要仪器第28-29页
    2 方法第29-32页
        2.1 HF饲料配制第29页
        2.2 动物分组第29页
        2.3 空腹血糖测定第29页
        2.4 IPGTT和IPITT第29页
        2.5 空腹血清胰岛素测定及HOMA-IR指数计算第29页
        2.6 油红O染色第29-30页
        2.7 天狼猩红-苦味酸染色第30页
        2.8 活性氧检测第30页
        2.9 肝组织丙二醛(MDA)含量检测第30页
        2.10 肝组织耗氧量测定第30页
        2.11 肝组织亚细胞结构观察第30-31页
        2.12 Western Blot第31-32页
        2.13 统计学分析第32页
    3 结果第32-46页
        3.1 高脂饮食诱导胰岛素抵抗的发生和发展第32-35页
        3.2 高脂饮食诱导胰岛素抵抗过程中的肝病理改变第35-38页
        3.3 高脂饮食诱导胰岛素抵抗过程中的肝氧化应激改变第38-40页
        3.4 高脂饮食诱导胰岛素抵抗过程中的肝线粒体改变第40-43页
        3.5 高脂饮食诱导胰岛素抵抗过程中的肝抗氧化酶改变第43-44页
        3.6 Nrf2、NRF-1、mtTFA在高脂饮食诱导的胰岛素抵抗发生发展中的动态变化第44-46页
    4 讨论第46-53页
第二部分 db/db鼠体内氧化应激与Nrf2(61 kD)、NRF-1/mt TFA的关联研究第53-61页
    1 材料第53-54页
        1.1 实验动物第53页
        1.2 主要试剂第53页
        1.3 主要仪器第53-54页
    2 方法第54-55页
        2.1 动物分组第54页
        2.2 血糖测定、血清胰岛素含量测定、HOMA-IR计算第54页
        2.3 油红O染色第54页
        2.4 MDA、T-GSH/GSSG、CAT、SOD、GSH-Px、TG测定第54-55页
        2.5 Western Blot第55页
        2.6 统计学分析第55页
    3 结果第55-59页
        3.1 db/db鼠发生胰岛素抵抗第55-56页
        3.2 db/db鼠发生肝脏脂肪变第56-57页
        3.3 db/db鼠肝脏氧化应激水平升高第57-58页
        3.4 db/db鼠肝脏抗氧化酶活性改变第58页
        3.5 db/db鼠肝脏抗氧化酶表达量改变第58-59页
        3.6 db/db鼠肝脏Nrf2、NRF-1、mtTFA表达改变第59页
    4 讨论第59-61页
第三部分 Nrf2(100 kD)上调抗氧化酶和与NRF-1/mt TFA的关联性研究第61-66页
    1 材料第61-62页
        1.1 细胞系第61页
        1.2 主要试剂第61页
        1.3 主要仪器第61-62页
    2 方法第62-63页
        2.1 细胞培养第62页
        2.2 质粒扩增第62页
        2.3 质粒提取第62-63页
        2.4 质粒转染第63页
        2.5 提取细胞蛋白第63页
        2.6 Western Blot第63页
        2.7 统计学分析第63页
    3 结果第63-65页
        3.1 转染pCDNA3-Myc3-Nrf2质粒过表达Nrf2引起蛋白表达改变第63-64页
        3.2 转染pCDNA3-Myc3-Nrf2质粒过表达Nrf2引起抗氧化酶表达改变第64-65页
    4 讨论第65-66页
小结第66-68页
参考文献第68-74页
个人简历和研究成果第74-76页
致谢第76页

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