| 中文摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第10-22页 |
| 1.1 南瓜概况 | 第10-13页 |
| 1.1.1 南瓜的生物学特性 | 第10-11页 |
| 1.1.2 南瓜的营养成分 | 第11-12页 |
| 1.1.3 南瓜的化学成分 | 第12-13页 |
| 1.2 多糖的简介 | 第13-16页 |
| 1.2.1 多糖的理化性质 | 第13-14页 |
| 1.2.2 南瓜多糖的药理作用研究 | 第14-16页 |
| 1.3 多糖的提取与纯化 | 第16-17页 |
| 1.3.1双水相萃取技术提取南瓜多糖 | 第16页 |
| 1.3.2 多糖的纯化 | 第16-17页 |
| 1.4 多糖的降解方法的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.4.1 化学降解法 | 第17-18页 |
| 1.4.2 物理降解法 | 第18-19页 |
| 1.4.3 生物降解法 | 第19页 |
| 1.5 非酶糖基化作用 | 第19-20页 |
| 1.5.1 AGEs的来源 | 第19-20页 |
| 1.5.2 AGEs的产生 | 第20页 |
| 1.5.3 AGEs的致病机制 | 第20页 |
| 1.6 本课题研究的目的及意义 | 第20-21页 |
| 1.7 本课题实验技术路线 | 第21-22页 |
| 第2章 材料与方法 | 第22-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 试剂 | 第22页 |
| 2.1.2 药品的配置 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第23-24页 |
| 2.2 方法 | 第24-30页 |
| 2.2.1 双水相萃取法提取南瓜多糖的工艺研究 | 第24-26页 |
| 2.2.1.1 标准曲线的绘制 | 第24页 |
| 2.2.1.2 双水相体系的配置 | 第24-25页 |
| 2.2.1.3 多糖含量的测定 | 第25页 |
| 2.2.1.4 利用乙醇/硫酸铵双水相体系萃取南瓜多糖 | 第25页 |
| 2.2.1.5 单因素试验 | 第25-26页 |
| 2.2.1.6 正交实验 | 第26页 |
| 2.2.1.7 验证实验 | 第26页 |
| 2.2.1.8 不同方法的比较 | 第26页 |
| 2.2.2 多糖的纯化 | 第26-27页 |
| 2.2.3 固相生物酶解南瓜多糖作用的研究 | 第27-28页 |
| 2.2.4 多糖抗蛋白质非酶糖基化活性研究 | 第28-30页 |
| 第3章 结果与分析 | 第30-42页 |
| 3.1 双水相萃取南瓜多糖工艺的研究 | 第30-33页 |
| 3.1.1 双水相体系的筛选 | 第30页 |
| 3.1.2单因素实验 | 第30-32页 |
| 3.1.3 正交实验结果分析 | 第32-33页 |
| 3.2 多糖的提纯 | 第33-34页 |
| 3.2.1 多糖的提取 | 第33页 |
| 3.2.2 Sevage法脱蛋白结果 | 第33-34页 |
| 3.3 固相生物酶解南瓜多糖作用的研究 | 第34-39页 |
| 3.3.1单因素实验 | 第34-37页 |
| 3.3.2 稳定性检测结果 | 第37-39页 |
| 3.4 多糖抗蛋白质非酶糖基化活性的研究 | 第39-42页 |
| 3.4.1 NBT还原实验 | 第39页 |
| 3.4.2 南瓜多糖对二羰基化合物生成的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.3 非酶糖基化终产物的测定 | 第40-42页 |
| 第4章 讨论 | 第42-44页 |
| 4.1 双水相萃取南瓜多糖的问题 | 第42页 |
| 4.2 固定化酶降解南瓜多糖的问题 | 第42页 |
| 4.3 非酶糖基化作用的问题 | 第42-43页 |
| 4.4 研究创新点及展望 | 第43-44页 |
| 4.4.1 研究创新点 | 第43页 |
| 4.4.2 展望 | 第43-44页 |
| 第5章 结论 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-54页 |
| 攻读硕士期间发表学术论文 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |