中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-8页 |
缩略语 | 第12-15页 |
前言 | 第15-19页 |
研究现状、成果 | 第15-17页 |
研究目的、方法 | 第17-18页 |
研究创新性 | 第18-19页 |
一、观察腺苷A2受体活化对心肌再灌注时线粒体氧化应激损伤的保护作用 | 第19-72页 |
1.1 材料和方法 | 第19-47页 |
1.1.1 研究对象 | 第19页 |
1.1.2 实验仪器 | 第19-20页 |
1.1.3 常用试剂 | 第20-22页 |
1.1.4 关键试剂 | 第22页 |
1.1.5 荧光试剂 | 第22页 |
1.1.6 试剂盒 | 第22页 |
1.1.7 抗体 | 第22页 |
1.1.8 建立大鼠离体心脏灌流和心肌I/R模型 | 第22-25页 |
1.1.9 大鼠心肌组织线粒体的提取 | 第25-27页 |
1.1.10 BCA蛋白定量 | 第27页 |
1.1.11 线粒体肿胀实验 | 第27-29页 |
1.1.12 线粒体呼吸控制率(Respiratory control ratio,RCR)测定 | 第29-30页 |
1.1.13 H9c2细胞的复苏、传代和冻存 | 第30-32页 |
1.1.14 细胞计数 | 第32-33页 |
1.1.15 建立H9c2细胞模拟I/R模型 | 第33-34页 |
1.1.16 JC-1 染色检测细胞线粒体膜电位变化 | 第34-36页 |
1.1.17 DCFH-DA检测总ROS相对含量 | 第36-37页 |
1.1.18 Mitosox Red荧光探针检测线粒体内超氧化物水平 | 第37-38页 |
1.1.19 Amplex red过氧化氢/过氧化物酶试剂盒测定H2O2水平和过氧化氢酶(Catalase)活性 | 第38-40页 |
1.1.20 总SOD活性检测 | 第40-42页 |
1.1.21 复合体I酶活性检测试剂盒检测线粒体复合体I活性 | 第42-43页 |
1.1.22 线粒体蛋白羰基化检测 | 第43-45页 |
1.1.23 考马斯亮蓝染色 | 第45-46页 |
1.1.24 透射电子显微镜(Transmission election microscopy,TEM)技术 | 第46页 |
1.1.25 统计学分析 | 第46-47页 |
1.2 结果 | 第47-68页 |
1.2.1 腺苷A2受体活化对I/R后线粒体结构和功能的影响 | 第47-50页 |
1.2.2 腺苷A2受体活化对I/R后线粒体mPTP开放的影响 | 第50-52页 |
1.2.3 腺苷A2受体活化对I/R引起的氧化应激的影响 | 第52-58页 |
1.2.4 腺苷A2受体活化抑制氧化应激损伤的机制 | 第58-68页 |
1.3 讨论 | 第68-71页 |
1.4 小结 | 第71-72页 |
二、探讨腺苷A2受体活化诱导心肌再灌注损伤保护作用的线粒体机制 | 第72-91页 |
2.1 材料和方法 | 第72-78页 |
2.1.1 新增仪器和试剂 | 第72页 |
2.1.2 Western blotting | 第72-76页 |
2.1.3 免疫沉淀富集复合体Ⅰ | 第76-77页 |
2.1.4 质谱鉴定蛋白种类 | 第77-78页 |
2.1.5 统计学分析 | 第78页 |
2.2 结果 | 第78-89页 |
2.2.1 Src酪氨酸激酶对腺苷A2受体活化抑制线粒体氧化应激损伤的作用 | 第78-83页 |
2.2.2 线粒体Src酪氨酸激酶与复合体Ⅰ活性之间的关系 | 第83-89页 |
2.3 讨论 | 第89-90页 |
2.4 小结 | 第90-91页 |
全文结论 | 第91-92页 |
论文创新点 | 第92-93页 |
参考文献 | 第93-98页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第98-99页 |
附录 | 第99-100页 |
综述 腺苷受体活化与心肌缺血/再灌注损伤 | 第100-122页 |
综述参考文献 | 第112-122页 |
致谢 | 第122-123页 |
个人简介 | 第123页 |