| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第12-23页 |
| 1.1 骨组织工程学研究进展 | 第12-13页 |
| 1.2 骨组织工程支架材料 | 第13-18页 |
| 1.2.1 天然生物材料 | 第14页 |
| 1.2.2 合成生物材料 | 第14-15页 |
| 1.2.3 复合生物材料 | 第15页 |
| 1.2.4 导电聚合物 | 第15-18页 |
| 1.3 骨组织工程支架的制备 | 第18-21页 |
| 1.3.1 静电纺丝技术在骨组织工程中的应用 | 第18页 |
| 1.3.2 电沉积技术在骨组织工程中的运用 | 第18-20页 |
| 1.3.3 ES在骨组织工程中的应用 | 第20-21页 |
| 1.4 本课题的研究内容及意义 | 第21-22页 |
| 1.5 本课题的主要创新点 | 第22-23页 |
| 第二章 不同参数对电化学沉积聚吡咯的影响 | 第23-38页 |
| 2.1 前言 | 第23-24页 |
| 2.2 实验材料和方法 | 第24-28页 |
| 2.2.1 实验材料及试剂 | 第24页 |
| 2.2.2 主要实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.3 实验装置示意图 | 第25页 |
| 2.2.4 纺丝液的制备 | 第25-26页 |
| 2.2.5 静电纺制备基底纳米纤维 | 第26页 |
| 2.2.6 电化学沉积法制备PPy/聚合物复合纳米材料 | 第26页 |
| 2.2.7 测试与表征 | 第26-28页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第28-36页 |
| 2.3.1 CV电压的影响 | 第28-30页 |
| 2.3.2 不同电极的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.3 不同掺杂剂的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.4 纳米纤维导电性测试 | 第32-34页 |
| 2.3.5 微观形貌观察 | 第34页 |
| 2.3.6 红外光谱分析 | 第34-35页 |
| 2.3.7 纳米纤维亲疏水性测试 | 第35页 |
| 2.3.8 纳米纤维的力学性能测试 | 第35-36页 |
| 2.3.9 XPS扫描分析 | 第36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-38页 |
| 第三章 导电性聚吡咯/聚乳酸复合材料的生物学评价 | 第38-44页 |
| 3.1 前言 | 第38页 |
| 3.2 实验材料和方法 | 第38-42页 |
| 3.2.1 实验材料及试剂 | 第38-39页 |
| 3.2.2 主要实验仪器 | 第39-40页 |
| 3.2.3 材料的准备和处理 | 第40页 |
| 3.2.4 细胞实验 | 第40-41页 |
| 3.2.5 统计学分析 | 第41-42页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第42-43页 |
| 3.3.1 细胞增殖分析 | 第42-43页 |
| 3.4 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 电刺激作用下聚吡咯/聚乳酸促进成骨的生物学评价 | 第44-53页 |
| 4.1 前言 | 第44页 |
| 4.2 实验材料和方法 | 第44-48页 |
| 4.2.1 实验材料及试剂 | 第44-45页 |
| 4.2.2 主要实验仪器 | 第45-46页 |
| 4.2.3 材料的准备和处理 | 第46页 |
| 4.2.4 细胞实验的培养和种植 | 第46-48页 |
| 4.2.5 统计学分析 | 第48页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第48-52页 |
| 4.3.1 细胞增殖实验 | 第48页 |
| 4.3.2 细胞的形貌观察 | 第48-49页 |
| 4.3.3 ALP活性检测 | 第49-50页 |
| 4.3.4 OCN染色 | 第50-52页 |
| 4.4 本章小结 | 第52-53页 |
| 第五章 结论与展望 | 第53-55页 |
| 5.1 实验主要结论 | 第53-54页 |
| 5.2 后续工作建议 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-60页 |
| 附录 攻读硕士期间科研成果及获奖情况 | 第60-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |