| 致谢 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第11-15页 |
| 1 引言 | 第15-19页 |
| 2 材料和方法 | 第19-32页 |
| 2.1 材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 细胞系 | 第19页 |
| 2.1.3 结肠组织样品 | 第19页 |
| 2.1.4 主要溶液及其配制 | 第19-20页 |
| 2.1.5 主要试剂和抗体 | 第20-21页 |
| 2.1.6 载体及其构建 | 第21页 |
| 2.1.7 主要设备和软件 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-32页 |
| 2.2.1 细胞培养和转染 | 第21-22页 |
| 2.2.2 MEF细胞和星形胶质细胞的分离 | 第22-23页 |
| 2.2.3 病毒包装和细胞感染 | 第23页 |
| 2.2.4 TRAF3全长基因及截断突变体表达载体的构建 | 第23-24页 |
| 2.2.5 细胞总RNA的提取和反转录反应 | 第24-25页 |
| 2.2.6 Real-time PCR | 第25-27页 |
| 2.2.7 小鼠基因型鉴定 | 第27-28页 |
| 2.2.8 Western blot免疫印迹检测 | 第28页 |
| 2.2.9 免疫共沉淀 | 第28页 |
| 2.2.10 Pull-down实验 | 第28-29页 |
| 2.2.11 细胞因子测定 | 第29页 |
| 2.2.12 TNBS诱导小鼠肠炎 | 第29-30页 |
| 2.2.13 骨髓嵌合体 | 第30页 |
| 2.2.14 MOG诱导小鼠EAE | 第30页 |
| 2.2.15 IL-17诱导的腹膜炎症 | 第30页 |
| 2.2.16 组织学分析 | 第30-31页 |
| 2.2.17 免疫组化染色及评分 | 第31页 |
| 2.2.18 统计学处理 | 第31-32页 |
| 3 实验结果 | 第32-64页 |
| 3.1 NDR1促进IL-17A诱导的细胞因子和趋化因子的产生 | 第32-37页 |
| 3.2 NDR1促进IL-17F诱导的细胞因子和趋化因子的产生 | 第37-39页 |
| 3.3 NDR1促进了IL-17诱导的腹膜炎症 | 第39页 |
| 3.4 NDR1促进MOG多肽诱导的EAE | 第39-42页 |
| 3.5 NDR1促进TNBS诱导的肠炎 | 第42-44页 |
| 3.6 NDR1在溃疡性结肠炎患者中的表达量增加 | 第44-45页 |
| 3.7 NDR1正向调控IL-17A和IL-17F诱导的信号分子的活化 | 第45-51页 |
| 3.8 NDR1特异性与TRAF3结合 | 第51-56页 |
| 3.9 NDR1通过靶向TRAF3促进IL-17信号通路 | 第56-59页 |
| 3.10 NDR2抑制IL-17介导的炎症反应 | 第59-61页 |
| 3.11 NDR1促进IL-17-Actl的结合 | 第61-64页 |
| 4 讨论 | 第64-68页 |
| 5 小结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-73页 |
| 综述 | 第73-80页 |
| 参考文献 | 第77-80页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第80页 |
