| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 中英文缩写 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-18页 |
| 1.黄芪多糖及其免疫药理作用概述 | 第10-12页 |
| ·黄芪多糖对免疫器官的作用 | 第10页 |
| ·黄芪多糖对免疫细胞的作用 | 第10页 |
| ·黄芪多糖对细胞免疫的影响 | 第10-11页 |
| ·黄芪多糖对体液免疫的影响 | 第11页 |
| ·黄芪多糖对粘膜免疫的影响 | 第11页 |
| ·黄芪多糖的抗病毒、抗菌作用 | 第11页 |
| ·黄芪多糖的抗肿瘤作用 | 第11页 |
| ·黄芪多糖的抗氧化作用 | 第11-12页 |
| 2.佐剂及其种类简介 | 第12-14页 |
| ·铝佐剂 | 第12页 |
| ·脂质体佐剂 | 第12页 |
| ·细胞因子佐剂 | 第12页 |
| ·皂苷及免疫刺激复合物(ISCOM)佐剂 | 第12-13页 |
| ·细菌毒素佐剂 | 第13页 |
| ·核酸和CpG序列佐剂 | 第13页 |
| ·植物多糖佐剂 | 第13-14页 |
| 3.白色念珠菌及其疫苗简介 | 第14-16页 |
| ·全菌疫苗 | 第14-15页 |
| ·糖结合疫苗 | 第15页 |
| ·多肽疫苗 | 第15页 |
| ·DNA 疫苗 | 第15页 |
| ·核糖体疫苗 | 第15-16页 |
| ·细胞壁表面成分疫苗 | 第16页 |
| ·杀伤细胞毒素疫苗 | 第16页 |
| ·蛋白疫苗 | 第16页 |
| 4.研究目的及意义 | 第16-18页 |
| 第二章 实验材料与方法 | 第18-28页 |
| 1 实验材料及仪器 | 第18-19页 |
| ·实验材料 | 第18页 |
| ·主要实验试剂 | 第18-19页 |
| ·实验仪器 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-28页 |
| ·rP-HSP90C 的制备 | 第19-22页 |
| ·APS 在 rP-HSP90C 中的免疫增强作用研究 | 第22-24页 |
| ·免疫动物 | 第22页 |
| ·Western blot 方法检测免疫小鼠抗血清中抗体的特异性 | 第22-23页 |
| ·ELISA 法检测免疫小鼠血清中特异性抗体滴度 | 第23-24页 |
| ·ELISA 试剂盒检测免疫小鼠抗血清中 IL-2、IL-12、IL-4、IL-10 的含量 | 第24页 |
| ·迟发型超敏反应实验 | 第24页 |
| ·APS 对免疫后小鼠抗系统性白色念珠菌感染的免疫保护作用的影响 | 第24-27页 |
| ·数据分析 | 第27-28页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第28-38页 |
| 1.rP-HSP90C 的 SDS-PAGE 电泳分析 | 第28页 |
| 2.APS 的免疫增强作用结果分析 | 第28-38页 |
| ·Western blot 检测免疫小鼠抗血清中抗体的特异性 | 第28-29页 |
| ·APS 对免疫小鼠抗血清中抗 rP-Hsp90C 特异性抗体滴度的影响 | 第29-32页 |
| ·APS 对免疫小鼠抗血清中 IL-2、IL-12、IL-4、IL-10 的影响 | 第32-33页 |
| ·APS 对小鼠迟发型超敏反应的影响 | 第33-34页 |
| ·APS 对免疫小鼠抗系统性白色念珠菌感染的免疫保护作用 | 第34-38页 |
| 第四章 讨论 | 第38-40页 |
| 1.免疫剂量的确定 | 第38页 |
| 2.APS 增强了 Th1 型和 Th2 免疫应答 | 第38-39页 |
| ·APS 增强了 Th1 免疫应答 | 第38-39页 |
| ·APS 增强了 Th2 型免疫应答 | 第39页 |
| 3.APS 增强了 rP-HSP90C 抗系统性白色念珠菌感染的免疫保护作用 | 第39-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 致谢 | 第44页 |
