| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 文献综述 | 第12-18页 |
| 第一章 戊型肝炎的研究进展 | 第12-18页 |
| ·戊型肝炎的研究进展 | 第12-16页 |
| ·戊型肝炎病毒的病原学研究 | 第12-13页 |
| ·戊型肝炎病毒的流行病学 | 第13-14页 |
| ·戊型肝炎病毒的诊断方法 | 第14-15页 |
| ·戊型肝炎病毒的动物模型和跨种感染 | 第15-16页 |
| ·戊型肝炎病毒的防护疫苗研究 | 第16页 |
| ·本研究的目的与意义 | 第16-18页 |
| 试验研究 | 第18-41页 |
| 第二章 猪HEV ORF2重组蛋白SORF2-C的原核表达 | 第18-23页 |
| ·材料 | 第18-20页 |
| ·质粒和菌株 | 第18页 |
| ·主要设备和仪器 | 第18页 |
| ·主要试剂 | 第18页 |
| ·主要试剂的配制 | 第18-20页 |
| ·方法 | 第20-21页 |
| ·猪HEV重组蛋白s ORF2-C的原核表达 | 第20-21页 |
| ·猪HEV重组蛋白s ORF2-C的纯化 | 第21页 |
| ·纯化抗原的浓度测定 | 第21页 |
| ·试验结果 | 第21-22页 |
| ·SDS-PAGE检测 | 第21页 |
| ·纯化抗原的浓度测定 | 第21-22页 |
| ·分析及讨论 | 第22-23页 |
| 第三章 单抗纯化以及辣根过氧化酶（HRP）标记 | 第23-30页 |
| ·材料 | 第23-25页 |
| ·杂交瘤细胞和实验动物 | 第23页 |
| ·主要设备和仪器 | 第23页 |
| ·主要试剂 | 第23页 |
| ·主要试剂的配制 | 第23-25页 |
| ·方法 | 第25-28页 |
| ·杂交瘤细胞的复苏与传代培养 | 第25页 |
| ·单抗腹水制备及单抗纯化 | 第25-27页 |
| ·辣根过氧化酶（HRP）标记单抗 | 第27-28页 |
| ·直接ELISA测定标记抗体效价 | 第28页 |
| ·试验结果 | 第28-29页 |
| ·单抗的浓度测定 | 第28页 |
| ·SDS-PAGE检测纯化后单抗 | 第28页 |
| ·直接ELISA测定标记抗体效价 | 第28-29页 |
| ·分析及讨论 | 第29-30页 |
| 第四章 猪HEV抗体阻断ELISA检测方法的建立 | 第30-34页 |
| ·材料 | 第30页 |
| ·血清 | 第30页 |
| ·主要设备和仪器 | 第30页 |
| ·主要试剂 | 第30页 |
| ·主要试剂的配制 | 第30页 |
| ·方法 | 第30-32页 |
| ·最佳单抗的筛选 | 第30页 |
| ·抗原优化浓度及单抗优化稀释比例的确定 | 第30-31页 |
| ·血清优化稀释比例的确定 | 第31页 |
| ·阻断ELISA方法的建立 | 第31页 |
| ·阻断ELISA方法确定 | 第31-32页 |
| ·试验结果 | 第32-33页 |
| ·为建立的阻断ELISA方法筛选单抗 | 第32页 |
| ·抗原优化浓度及单抗优化稀释比例的确定 | 第32页 |
| ·血清优化稀释比例的确定 | 第32-33页 |
| ·阻断ELISA方法的PI值及cut-off值 | 第33页 |
| ·分析及讨论 | 第33-34页 |
| 第五章 阻断ELISA的方法评价 | 第34-41页 |
| ·材料 | 第34-35页 |
| ·血清、单抗及抗原 | 第34页 |
| ·主要设备和仪器 | 第34页 |
| ·试验用主要试剂 | 第34页 |
| ·主要试剂的配制 | 第34-35页 |
| ·方法 | 第35-37页 |
| ·阻断ELISA方法的敏感性评定 | 第35页 |
| ·阻断ELISA方法的特异性评定 | 第35页 |
| ·阻断ELISA方法的重复性评定 | 第35页 |
| ·阻断ELISA与其它方法一致性的比较 | 第35-37页 |
| ·数据处理及分析 | 第37页 |
| ·试验结果 | 第37-40页 |
| ·阻断ELISA方法的敏感性评定 | 第37-38页 |
| ·阻断ELISA方法的特异性评定 | 第38页 |
| ·阻断ELISA方法的重复性评定 | 第38-39页 |
| ·阻断ELISA方法与其它方法的一致性评定 | 第39-40页 |
| ·数据统计分析 | 第40页 |
| ·分析及讨论 | 第40-41页 |
| 结论 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 附录 | 第47-49页 |
| 缩略词 | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 作者简介 | 第51页 |