| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-14页 |
| 第2章 实验材料和实验方法 | 第14-22页 |
| ·实验材料 | 第14-15页 |
| ·实验动物 | 第14页 |
| ·药品及试剂 | 第14-15页 |
| ·主要仪器及器材 | 第15页 |
| ·方法 | 第15-22页 |
| ·动物分组 | 第15-16页 |
| ·大鼠颈动脉脉损伤模型的建立 | 第16页 |
| ·标本的获取及处理 | 第16-17页 |
| ·血管组织标本形态学 | 第17页 |
| ·ELISA法检测大鼠血清中VEGF和TNF-α的水平 | 第17-18页 |
| ·马森氏胶原纤维染色 | 第18-19页 |
| ·免疫组织化学染色法检测TGF-?1 和MMP-2 的表达 | 第19页 |
| ·RT-PCR检测组织中eNOS mRNA的水平 | 第19-20页 |
| ·Western Blot法检测血管组织中P-Akt和T-Akt的表达 | 第20-21页 |
| ·数据统计及处理 | 第21-22页 |
| 第3章 结果 | 第22-35页 |
| ·大鼠颈动脉球囊损伤模型构建结果 | 第22页 |
| ·血管组织病理学评价 | 第22-25页 |
| ·光镜下血管组织形态学大体观察： | 第22页 |
| ·血管组织新生内膜厚度的结果分析 | 第22-23页 |
| ·血管组织新生内膜与中膜面积比的结果分析 | 第23-25页 |
| ·ELISA法检测VEGF和TNF-α水平结果分析 | 第25页 |
| ·胶原纤维染色结果分析 | 第25-29页 |
| ·血管组织免疫组化染色评分 | 第29-33页 |
| ·TGF-?1 免疫组化染色评分 | 第29-30页 |
| ·MMP-2 免疫组化染色评分 | 第30-33页 |
| ·大鼠血管组织中eNOS mRNA的结果分析 | 第33-34页 |
| ·大鼠血管组织中P-Akt和T-Akt的表达结果分析 | 第34-35页 |
| 第4章 讨论 | 第35-42页 |
| ·关于大鼠颈动脉损伤模型的建立 | 第35-36页 |
| ·再狭窄概述 | 第36-37页 |
| ·细胞因子在再狭窄过程中的作用 | 第37-39页 |
| ·胶原在再狭窄发生过程中的作用 | 第39-40页 |
| ·促红细胞生成素在抑制血管重构过程中的作用 | 第40-42页 |
| 第5章 结论 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-48页 |
| 综述 | 第48-54页 |
| 参考文献 | 第52-54页 |
