| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-13页 |
| 1 引言 | 第13-32页 |
| ·植物响应非生物胁迫的机理 | 第13-23页 |
| ·植物对非生物胁迫的感知过程 | 第14-18页 |
| ·Ca~(2+)在感知非生物胁迫中的作用 | 第14-15页 |
| ·磷脂信号系统在感知非生物胁迫中的作用 | 第15-16页 |
| ·ROS在感知非生物胁迫中的作用 | 第16-17页 |
| ·MAPK在感知非生物胁迫中的作用 | 第17-18页 |
| ·非生物胁迫中的转录调控网 | 第18-19页 |
| ·非生物胁迫中的功能基因与功能分子 | 第19-23页 |
| ·分子伴侣类蛋白 | 第19-20页 |
| ·可溶性物质调节渗透平衡 | 第20-22页 |
| ·抗氧化类酶和小分子 | 第22页 |
| ·离子通道和转运蛋白 | 第22-23页 |
| ·NAC转录因子 | 第23-26页 |
| ·NAC转录因子的结构与分类 | 第23页 |
| ·NAC转录因子的功能 | 第23-26页 |
| ·MYB转录因子 | 第26-28页 |
| ·MYB转录因子的结构与分类 | 第26页 |
| ·MYB转录因子的功能 | 第26-28页 |
| ·昼夜节律调控机制 | 第28-30页 |
| ·中间锦鸡儿 | 第30-31页 |
| ·研究目的与意义 | 第31页 |
| ·技术路线 | 第31-32页 |
| 2 实验材料和方法 | 第32-48页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·植物材料 | 第32页 |
| ·菌株 | 第32页 |
| ·质粒 | 第32页 |
| ·实验药品及仪器 | 第32-35页 |
| ·实验试剂及酶 | 第32-33页 |
| ·试剂盒 | 第33页 |
| ·实验药品 | 第33页 |
| ·培养基和实验所需其它试剂的配制 | 第33-35页 |
| ·实验仪器 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-48页 |
| ·植物材料处理方法 | 第35-36页 |
| ·DNA提取 | 第36页 |
| ·RNA提取与反转录 | 第36-39页 |
| ·荧光定量PCR | 第39页 |
| ·质粒提取与PCR产物胶回收 | 第39页 |
| ·目的片段与克隆载体及表达载体的连接 | 第39-41页 |
| ·大肠杆菌感受态制备与转化 | 第41页 |
| ·c DNA末端快速扩增 (RACE) | 第41页 |
| ·基因全长克隆及分析 | 第41-43页 |
| ·启动子克隆及分析 | 第43页 |
| ·表达载体构建 | 第43-44页 |
| ·原生质体制备及转化 | 第44-45页 |
| ·农杆菌感受态制备与转化 | 第45-46页 |
| ·拟南芥浸花法转化与纯合体筛选 | 第46页 |
| ·GUS组织化学染色 | 第46-47页 |
| ·GFP亚细胞定位观察 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-78页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4基因全长的克隆 | 第48-51页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4的序列分析 | 第51-52页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4的蛋白序列比对 | 第51-52页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4蛋白序列进化树的构建 | 第52页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4的表达模式 | 第52-55页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4的亚细胞定位观察 | 第55-57页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4的GFP融合载体的构建 | 第55-56页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4在原生质体中的亚细胞定位观察 | 第56页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4在稳定表达株系中的亚细胞定位观察 | 第56-57页 |
| ·CiNAC4的启动子克隆与GUS组织化学染色 | 第57-61页 |
| ·CiNAC4的启动子克隆及顺式作用元件分析 | 第57-59页 |
| ·CiNAC4启动子驱动GUS报告基因表达载体构建 | 第59页 |
| ·ProCiNAC4:GUS组织化学染色 | 第59-61页 |
| ·过表达CiNAC3和CiNAC4转基因拟南芥株系获得 | 第61-63页 |
| ·过表达CiNAC3和CiNAC4表达载体构建与鉴定 | 第61-62页 |
| ·过表达CiNAC3和CiNAC4转基因株系获得与鉴定 | 第62-63页 |
| ·过表达CiNAC3和CiNAC4拟南芥对ABA的响应 | 第63-66页 |
| ·过表达CiNAC3和CiNAC4降低拟南芥对ABA的敏感性 | 第63-65页 |
| ·过表达CiNAC3和CiNAC4对ABA合成及信号通路基因的影响 | 第65-66页 |
| ·过表达CiNAC3和CiNAC4增强了拟南芥对Na Cl的耐受性 | 第66-68页 |
| ·过表达CiNAC4促进拟南芥侧根形成 | 第68-70页 |
| ·CiMYB177的全长克隆及序列分析 | 第70-71页 |
| ·CiMYB177的全长克隆 | 第70页 |
| ·Ci MYB177的序列分析 | 第70-71页 |
| ·CiMYB177的表达模式 | 第71-73页 |
| ·CiMYB177的表达受昼夜节律调控 | 第73-74页 |
| ·CiMYB177的亚细胞定位观察 | 第74-75页 |
| ·CiMYB177的GFP融合载体的构建与鉴定 | 第74页 |
| ·Ci MYB177的亚细胞定位观察 | 第74-75页 |
| ·CiMYB177的启动子克隆与分析 | 第75-78页 |
| ·CiMYB177的启动子克隆 | 第75-76页 |
| ·CiMYB177启动子的顺式作用元件分析 | 第76-78页 |
| 4 讨论 | 第78-84页 |
| ·通过对CiNAC3和CiNAC4序列的分析预测其功能 | 第78-79页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4的表达模式 | 第79-80页 |
| ·CiNAC4的启动子分析与GUS组织化学染色 | 第80-81页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4与ABA的关系 | 第81页 |
| ·NAC转录因子与生长素 | 第81-82页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4增强拟南芥对Na Cl的耐受性 | 第82页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4的作用方式存在剂量效应 | 第82页 |
| ·CiNAC3和CiNAC4在功能上的相同与差异之处 | 第82-83页 |
| ·CiMYB177的序列分析及其功能推测 | 第83页 |
| ·非生物胁迫与昼夜节律 | 第83-84页 |
| 5 结论 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 附表 | 第86-89页 |
| 参考文献 | 第89-111页 |
| 作者简介 | 第111页 |
