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水生植物黑藻C4光合途径诱导的分子机制

目录第1-7页
中文摘要第7-9页
Abstract第9-11页
第一部分 文献综述第11-27页
 1 C4 光合作用第11-13页
 2. C3、C4 植物以及 CAM 植物的光合作用机制比较第13-14页
 3. C4 光合作用的进化第14-18页
   ·C4 植物进化的原始动力第14-15页
     ·低浓度 CO_2第14-15页
     ·盐渍化、高温以及干旱第15页
     ·C4 途径消除 Rubisco 的加氧反应第15页
   ·C4 植物的进化历程第15-17页
     ·C4 植物的分子进化第17-18页
     ·PEPC第17页
     ·NADP-ME第17-18页
     ·PPDK第18页
     ·Rubisco第18页
 4. 单细胞 C4 和黑藻第18-21页
   ·黑藻中单细胞 C4 的转化第19-20页
   ·黑藻中单细胞 C4 光合作用的过程第20-21页
 5 流式细胞技术在植物 DNA 含量测定中的应用第21-22页
   ·流式细胞仪的结构第21页
   ·流式细胞技术的原理第21-22页
   ·利用流式细胞技术检测植物 DNA 含量第22页
 6. δ13C 稳定碳同位素的测定第22-23页
 7 RNA-Seq 技术的应用第23-25页
 8 本实验的意义第25-27页
第二部分 实验论文第27-65页
 第一章 黑藻 C4 光合作用诱导的分子机制第27-60页
  1. 实验材料和仪器第27-29页
   ·实验材料及培养条件第27页
   ·实验仪器以及器材第27-28页
   ·化学试剂第28页
   ·Hoagland 配方第28-29页
   ·引物第29页
   ·生物信息学分析网站以及分析软件第29页
  2. 实验方法第29-38页
   ·CTAB 法提取植物基因组 DNA第29-30页
   ·Trizol 法提取植物 RNA第30页
   ·FAST QUANT cDNA(with gDNA)反转录试剂盒第30-31页
   ·RT-PCR第31-32页
   ·半定量 PCR第32-33页
   ·酶活的测定第33-35页
     ·PEPC 酶活测定预实验所用药品配方第33-34页
     ·蛋白提取液的配制第34页
     ·酶活测定液的配制第34-35页
     ·酶活的测定方法第35页
   ·RNA-Seq 样品制备第35-38页
     ·QIAGEN 试剂盒提取 RNA 步骤第35-36页
     ·QIAGEN 试剂盒纯化 RNA第36页
     ·RNA 样品质量要求第36-37页
     ·测序数据的处理第37-38页
  3. 实验结果与分析第38-45页
   ·黑藻培养体系第38-39页
     ·培养基质的准备第38-39页
     ·培养条件第39页
   ·黑藻低 CO2 的处理第39-40页
   ·黑藻 C4 的鉴定第40-43页
     ·酶活的测定第40-41页
     ·PCR 验证第41-42页
     ·半定量 PCR 结果第42页
     ·δ13C 的检测第42-43页
   ·RNA-Seq 样品的准备第43-45页
   ·RNA-Seq 数据的分析第45页
  4. RNA-seq 结果及分析第45-58页
   ·差异表达基因的分析第46页
   ·测序的 GO 分析第46-47页
   ·光合作用关键酶的分析第47-50页
   ·光呼吸关键酶的分析第50-53页
   ·KEGG 分析第53-54页
   ·差异表达的编码转录因子的基因第54-56页
   ·黑藻低 CO2_应答基因第56-58页
  5 讨论第58-60页
 第二章 基于流式细胞技术分析的黑藻 DNA 含量第60-65页
  1. 实验材料和仪器第60页
   ·实验材料及培养条件第60页
   ·实验仪器以及器材第60页
  2. 实验方法第60-62页
   ·解离液的配制第60-61页
   ·PI 染色液配方第61页
   ·细胞悬浊液的制备第61页
   ·细胞荧光染色第61-62页
   ·流式细胞仪检测第62页
  3.实验结果及分析第62-63页
  4.讨论第63-65页
参考文献第65-74页
致谢第74页

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