| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 符号、单位、术语等的说明 | 第12-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-25页 |
| ·糖尿病简介及分类 | 第15页 |
| ·Ⅱ型糖尿病发病机理及治疗药物 | 第15-18页 |
| ·水翁花及DMC生物活性的研究现状 | 第18-22页 |
| ·抗肿瘤及抗药物外排 | 第18-19页 |
| ·抗高血糖 | 第19-20页 |
| ·抗炎 | 第20页 |
| ·抗氧化 | 第20-21页 |
| ·强心 | 第21页 |
| ·神经保护 | 第21页 |
| ·胆碱酯酶抑制剂 | 第21页 |
| ·蛋白酶抑制剂 | 第21页 |
| ·抗高血脂 | 第21-22页 |
| ·急性肝损伤 | 第22页 |
| ·抗腹泻 | 第22页 |
| ·抗微生物 | 第22页 |
| ·抗病毒 | 第22页 |
| ·立题的依据和意义 | 第22-23页 |
| ·主要研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 DMC对碳水化合物消化酶的作用 | 第25-37页 |
| ·引言 | 第25页 |
| ·材料与溶液配制 | 第25-27页 |
| ·主要实验试剂 | 第25-26页 |
| ·主要实验仪器 | 第26页 |
| ·试剂的配制 | 第26-27页 |
| ·实验方法 | 第27-30页 |
| ·猪胰腺α-淀粉酶抑制实验 | 第27-29页 |
| ·大鼠小肠α-葡萄糖苷酶实验 | 第29-30页 |
| ·统计学分析 | 第30页 |
| ·实验结果 | 第30-35页 |
| ·猪胰腺α-淀粉酶的活力测定 | 第30-32页 |
| ·DMC对猪胰腺α-淀粉酶的抑制作用 | 第32-33页 |
| ·DMC对猪胰腺α-淀粉酶的抑制类型 | 第33页 |
| ·大鼠小肠α-葡萄糖苷酶活力 | 第33-34页 |
| ·DMC对大鼠小肠α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第34-35页 |
| ·实验讨论 | 第35-36页 |
| ·本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 DMC对葡萄糖在小肠内吸收的作用 | 第37-59页 |
| ·引言 | 第37页 |
| ·材料与溶液配制 | 第37-41页 |
| ·主要实验试剂 | 第37-38页 |
| ·主要实验仪器及耗材 | 第38-39页 |
| ·细胞株 | 第39页 |
| ·试剂的配制 | 第39-40页 |
| ·常规细胞培养技术 | 第40-41页 |
| ·实验方法 | 第41-47页 |
| ·支原体检测实验 | 第41页 |
| ·跨膜电阻值(TEER)的测量 | 第41-42页 |
| ·小肠细胞Caco-2转运实验的阳性和阴性对照 | 第42-43页 |
| ·透射电子显微镜(TEM)检测 | 第43页 |
| ·P-糖蛋白抑制实验 | 第43-45页 |
| ·建立体外(Caco-2细胞)体内(人体吸收)相关性的渗透性实验 | 第45-46页 |
| ·DMC对小肠中葡萄糖转运的作用 | 第46-47页 |
| ·统计学处理 | 第47页 |
| ·实验结果 | 第47-57页 |
| ·Caco-2细胞没有支原体感染 | 第47页 |
| ·Caco-2细胞的标准跨膜电阻值(TEER) | 第47-48页 |
| ·华法林和荧光黄的标准渗透值 | 第48-50页 |
| ·Caco-2细胞的透射电子显微镜(TEM)特征 | 第50-51页 |
| ·Caco-2细胞的P-糖蛋白表达 | 第51-52页 |
| ·体外(Caco-2细胞渗透值)和体内(人体吸收值)的相关性 | 第52-55页 |
| ·Caco-2细胞的验证结果 | 第55页 |
| ·DMC抑制小肠中葡萄糖的转运 | 第55-57页 |
| ·实验讨论 | 第57-58页 |
| ·本章小结 | 第58-59页 |
| 第四章 DMC对胰岛素分泌的作用 | 第59-85页 |
| ·引言 | 第59页 |
| ·材料与溶液配制 | 第59-61页 |
| ·实验试剂与仪器 | 第59-60页 |
| ·主要实验仪器及耗材 | 第60-61页 |
| ·细胞株 | 第61页 |
| ·试剂的配制 | 第61页 |
| ·常规细胞培养技术 | 第61页 |
| ·实验方法 | 第61-72页 |
| ·对慢性葡萄糖毒损伤胰岛的胰岛素分泌作用 | 第61-63页 |
| ·RNA提取和定量RT-PCR | 第63-68页 |
| ·Western blot(蛋白印迹)实验 | 第68-71页 |
| ·一氧化氮(NO)的测定 | 第71页 |
| ·统计学分析 | 第71-72页 |
| ·实验结果 | 第72-81页 |
| ·DMC刺激慢性葡萄糖毒损伤RIN-5F细胞分泌胰岛素 | 第72-74页 |
| ·DMC提高慢性葡萄糖毒性损伤RIN-5F细胞胰岛素合成信号通路的基因表达 | 第74-76页 |
| ·DMC刺激慢性葡萄糖毒性损伤RIN-5F细胞的PDX-1蛋白表达 | 第76-78页 |
| ·DMC抑制慢性葡萄糖毒性损伤RIN-5F细胞的NO释放 | 第78-80页 |
| ·DMC抑制慢性葡萄糖毒性损伤RIN-5F细胞的iNOS和MCP-1 mRNA表达 | 第80-81页 |
| ·实验讨论 | 第81-83页 |
| ·本章小结 | 第83-85页 |
| 第五章 DMC对脂肪细胞分化和摄取葡萄糖的作用 | 第85-100页 |
| ·引言 | 第85页 |
| ·材料与溶液配制 | 第85-88页 |
| ·实验试剂与仪器 | 第85-87页 |
| ·主要实验仪器及耗材 | 第87页 |
| ·细胞株 | 第87页 |
| ·试剂的配制 | 第87-88页 |
| ·常规细胞培养技术 | 第88页 |
| ·实验方法 | 第88-90页 |
| ·葡萄糖摄取实验中的细胞培养和分化 | 第88页 |
| ·葡萄糖摄取实验 | 第88-89页 |
| ·肝糖原合成实验 | 第89页 |
| ·3T3-L1细胞中的脂肪积累实验 | 第89页 |
| ·3T3-L1细胞中的基因和蛋白表达实验 | 第89-90页 |
| ·统计学分析 | 第90页 |
| ·实验结果 | 第90-97页 |
| ·DMC促进3T3-L1细胞对葡萄糖的摄取 | 第90-91页 |
| ·DMC对3T3-L1细胞中脂滴堆积的作用 | 第91-94页 |
| ·DMC对3T3-L1细胞产生脂联素的作用 | 第94-95页 |
| ·DMC对3T3-L1细胞中C/EBP-α和PPAR-γ基因水平表达的作用 | 第95-96页 |
| ·DMC对3T3-L1细胞中PPAR-γ蛋白水平表达的作用 | 第96-97页 |
| ·实验讨论 | 第97-98页 |
| ·本章小结 | 第98-100页 |
| 第六章 结论与展望 | 第100-102页 |
| ·结论 | 第100-101页 |
| ·展望 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-109页 |
| 附录 | 第109-110页 |
| 致谢 | 第110-111页 |
| 攻读博士期间撰写的论文 | 第111页 |
