| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略语 | 第9-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-24页 |
| 第二章 实验研究 | 第24-48页 |
| 实验一 外周血 CD4 ~+、 CD8 ~+T 、 CD4 ~+CD25 ~+Treg 在绵羊接种布鲁氏菌 M5- 90 弱毒疫苗后的动态变化 | 第24-35页 |
| 摘要 | 第24页 |
| 1 材料与方法 | 第24-25页 |
| ·试剂 | 第24-25页 |
| ·实验动物 | 第25页 |
| ·免疫程序的制定 | 第25页 |
| ·流式细胞术检测 | 第25页 |
| ·数据统计与分析 | 第25页 |
| 2 结果 | 第25-34页 |
| ·流式细胞检测数据 | 第25页 |
| ·CD4 ~+T 淋巴细胞亚群的动态变化 | 第25-28页 |
| ·CD8 ~+T 淋巴细胞亚群的动态变化 | 第28-30页 |
| ·CD25~+T 淋巴细胞亚群动态变化 | 第30-32页 |
| ·CD4~+CD25 ~+Treg 的动态变化 | 第32-34页 |
| 3 讨论 | 第34-35页 |
| 实验二 绵羊接种布鲁氏菌 M5- 90 弱毒疫苗后 IL- 1β、 IL- 6 及抗体水平检测研究 | 第35-42页 |
| 摘要 | 第35-36页 |
| 1 材料与方法 | 第36-37页 |
| ·菌株、主要试剂与材料 | 第36页 |
| ·实验动物的检测与 M5- 90 疫苗株的免疫程序制定 | 第36页 |
| ·抗体水平的测定 | 第36页 |
| ·小鼠抗羊 IL - 1β、兔抗羊 IL -6 、酶标二抗最佳工作浓度的确定 | 第36-37页 |
| ·间接 ELISA操作程序 | 第37页 |
| ·SPSS 统计分析 | 第37页 |
| 2 结果 | 第37-40页 |
| ·抗体水平检测 | 第37-38页 |
| ·一抗、酶标二抗最佳工作浓度的确定 | 第38-39页 |
| ·间接 ELISA检测结果 | 第39-40页 |
| 3 讨论 | 第40-42页 |
| 实验三 绵羊接种布鲁氏菌 M5- 90 后 Treg 细胞中 Foxp3 基因表达的检测研究 | 第42-48页 |
| 摘要 | 第42页 |
| 1 材料与方法 | 第42-44页 |
| ·试剂与仪器 | 第42页 |
| ·培养基 | 第42-43页 |
| ·PBMC 的获得 | 第43页 |
| ·细胞计数 | 第43页 |
| ·PBMC 的冻存与复苏 | 第43页 |
| ·提取 RNA 反转录 | 第43页 |
| ·引物设计 | 第43-44页 |
| ·RT-PCR 检测 Foxp3 的表达 | 第44页 |
| 2 结果 | 第44-45页 |
| ·淋巴细胞的分离计数 | 第44页 |
| ·Foxp3 的表达检测 | 第44-45页 |
| 3 讨论 | 第45-48页 |
| 全文总结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 附录 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 作者简介 | 第58页 |
| 在学校期间参与的研究课题 | 第58页 |
| 发表论文 | 第58-59页 |
| 附件 | 第59页 |
