中文摘要 | 第1-10页 |
ABSTRACT | 第10-14页 |
英文缩略语 | 第14-16页 |
文献综述 | 第16-33页 |
参考文献 | 第29-33页 |
前言 | 第33-38页 |
参考文献 | 第36-38页 |
第一部分:体内试验部分 | 第38-90页 |
第一章 SL提取物对低切应力介导的兔动脉粥样硬化形成的作用研究 | 第38-63页 |
1 材料与方法 | 第38-46页 |
·实验动物 | 第38页 |
·使用仪器 | 第38-39页 |
·试剂与药品 | 第39-41页 |
·动物分组及给药 | 第41页 |
·动物模型的构建 | 第41-42页 |
·血流动力学测定 | 第42-43页 |
·血液学检测 | 第43页 |
·病理学检查 | 第43-44页 |
·扫描电镜观察 | 第44-45页 |
·统计方法 | 第45-46页 |
2 结果 | 第46-56页 |
·动物模型的电磁血流量计观测评价 | 第46-47页 |
·家兔体重水平比较 | 第47页 |
·血管管径 | 第47-48页 |
·全血表观粘度 | 第48-49页 |
·SL提取物对As模型家兔颈总动脉血流量的影响 | 第49页 |
·SL提取物对As模型家兔颈总动脉切应力的影响 | 第49-50页 |
·SL提取物对As家兔血清TC、TG的影响 | 第50-51页 |
·SL提取物对As家兔血清中HDL-C、LDL-C的影响 | 第51页 |
·SL提取物对家兔颈总动脉病理形态的影响 | 第51-52页 |
·组织学切片统计SL提取物对斑块发生率的影响 | 第52页 |
·SL提取物对家兔颈总动脉近心端MIT的影响 | 第52-53页 |
·扫描电镜观察结果 | 第53-56页 |
3 讨论 | 第56-61页 |
4 参考文献 | 第61-63页 |
第二章 SL提取物对低切应力介导的兔动脉粥样硬化形成的机制研究 | 第63-90页 |
1 材料与方法 | 第63-75页 |
·实验动物 | 第63页 |
·使用仪器 | 第63-64页 |
·试剂与药品 | 第64-66页 |
·动物分组及给药 | 第66-67页 |
·动物模型的构建 | 第67页 |
·组织免疫组化染色 | 第67-68页 |
·免疫印迹(Western blot) | 第68-74页 |
·统计方法 | 第74-75页 |
2 结果 | 第75-83页 |
·分子生物学检测蛋白的表达 | 第75-78页 |
·免疫组化技术检测各组MLCK的表达 | 第78-80页 |
·免疫组化技术检测各组ROCK的表达 | 第80-83页 |
3 讨论 | 第83-87页 |
4 参考文献 | 第87-90页 |
第二部分:体外实验部分 | 第90-128页 |
第一章 SL提取物干预剪应力介导的人脐动脉内皮细胞钙内流的研究 | 第90-106页 |
1 材料与方法 | 第90-97页 |
·实验细胞 | 第90页 |
·实验仪器 | 第90-91页 |
·实验材料 | 第91页 |
·试剂与药品 | 第91-92页 |
·其他生化试剂 | 第92-93页 |
·人脐动脉内皮细胞的培养和干预 | 第93-96页 |
·钙离子荧光强度的分析 | 第96页 |
·统计学分析 | 第96-97页 |
2 结果 | 第97-102页 |
·不同剪应力诱导的[Ca~(2+)]i的变化 | 第97-99页 |
·SL提取物干预钙内流实验 | 第99-101页 |
·SL提取物干预钙内流的机制 | 第101-102页 |
3 讨论 | 第102-104页 |
4 参考文献 | 第104-106页 |
第二章 SL提取物对切应力介导的细胞骨架重排的作用机制研究 | 第106-128页 |
1 材料与方法 | 第106-112页 |
·实验细胞 | 第106页 |
·实验仪器 | 第106页 |
·实验材料 | 第106页 |
·试剂与药品 | 第106-107页 |
·其他生化试剂 | 第107页 |
·抗体的稀释 | 第107-108页 |
·人脐动脉内皮细胞的培养和干预 | 第108-111页 |
·统计学分析 | 第111-112页 |
2 结果 | 第112-124页 |
·SL提取物对剪应力介导的细胞骨架重排的作用 | 第112-116页 |
·SL提取物干预低切应力诱导的细胞骨架重排的机制研究 | 第116-123页 |
附图 | 第123-124页 |
3 讨论 | 第124-127页 |
4 参考文献 | 第127-128页 |
结语与展望 | 第128-130页 |
致谢 | 第130-132页 |
个人简历 | 第132-134页 |
附录 | 第134-137页 |