| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-9页 |
| 第1章 综述 | 第9-15页 |
| ·壁虎传统炮制方法抗肿瘤进展 | 第9-11页 |
| ·壁虎水煎液抗肿瘤 | 第11页 |
| ·壁虎醇提物 | 第11-12页 |
| ·壁虎经层析分离纯化的提取物 | 第12页 |
| ·壁虎经酶解的提取物 | 第12页 |
| ·壁虎多糖 | 第12-13页 |
| ·小结 | 第13-15页 |
| 第2章 引言 | 第15-17页 |
| 第3章 材料与方法 | 第17-27页 |
| ·实验材料 | 第17-21页 |
| ·细胞株 | 第17页 |
| ·动物 | 第17页 |
| ·试剂 | 第17-18页 |
| ·仪器 | 第18页 |
| ·药物 | 第18-19页 |
| ·试剂配置 | 第19-21页 |
| ·实验方法 | 第21-27页 |
| ·GCPs 的制备 | 第21页 |
| ·GCPs 的 HPLC 分析 | 第21页 |
| ·使用 Trincene-SDS-PAGE 对 GCPs 分析 | 第21页 |
| ·GCPs 对三种消化道细胞增殖抑制实验 | 第21-22页 |
| ·Hoechst33258 荧光染色观察细胞凋亡的形态变化 | 第22-23页 |
| ·TUNEL 法检测细胞凋亡率 | 第23页 |
| ·Western-blot 法检测 bcl-2、bax 凋亡蛋白的表达 | 第23-24页 |
| ·GCPs 对 H22 移植瘤小鼠的生长抑制实验 | 第24页 |
| ·中药壁虎对免疫功能的影响 | 第24页 |
| ·Western-blot 法检测瘤组织中 VEGF 蛋白的表达 | 第24-25页 |
| ·ELISA 法测定 S180 荷瘤小鼠血清 TNF-α、IL-6 的含量 | 第25页 |
| ·统计学方法 | 第25-27页 |
| 第4章 结果 | 第27-34页 |
| ·对 GCPs 的分析 | 第27页 |
| ·高效液相色谱法（HPLC）对 GCPs 的分析结果 | 第27页 |
| ·聚丙烯酰氨凝胶电泳法（Trincene-SDS-PAGE）对 GCPs 的分析结果 | 第27页 |
| ·体外抗肿瘤活性实验结果 | 第27-31页 |
| ·细胞形态学观察 | 第27页 |
| ·GCPs 对消化道肿瘤细胞增殖的抑制作用 | 第27-30页 |
| ·HepG2 细胞凋亡的形态学改变 | 第30页 |
| ·TUNEL 法检测 HepG2 细胞的凋亡率 | 第30-31页 |
| ·细胞内凋亡蛋白 bcl-2 和 bax 的表达水平 | 第31页 |
| ·体内抗肿瘤活性实验结果 | 第31-34页 |
| ·GCPs 对小鼠 H22 移植瘤的生长抑制作用 | 第31-32页 |
| ·GCPs 对荷瘤小鼠免疫功能影响 | 第32页 |
| ·GCPs 对瘤组织中 VEGF 表达的影响 | 第32页 |
| ·GCPs 对 H22 移植瘤小鼠血清 TNF-α，IL-6 含量的影响 | 第32-34页 |
| 第5章 讨论 | 第34-40页 |
| ·GCPs 的提取及成分分析 | 第34-35页 |
| ·针对 GCPs 的提取方法 | 第34-35页 |
| ·对 GCPs 的分析 | 第35页 |
| ·GCPs 对癌细胞增殖的抑制作用 | 第35-36页 |
| ·GCPs 抑制三种消化道癌细胞的增殖 | 第35-36页 |
| ·体内实验证实 GCPs 具有抑制 H22 移植瘤生长的作用 | 第36页 |
| ·GCPs 具有抑制肿瘤增殖和诱导其凋亡的作用 | 第36-38页 |
| ·GCPs 抑制肝癌 HepG2 细胞中 PCNA 的表达 | 第36页 |
| ·GCPs 诱导肝癌 HepG2 细胞凋亡 | 第36-37页 |
| ·GCPs 具有提高机体免疫力的作用 | 第37页 |
| ·GCPs 具有抑制肿瘤血管生成的作用 | 第37-38页 |
| ·GCPs 具有降低 H22 移植瘤小鼠血清中 TNF-α，IL-6 含量的作用 | 第38页 |
| ·进一步工作 | 第38-40页 |
| 第6章 结论 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-47页 |
| 缩略语词汇表 | 第47-48页 |
| 附录 | 第48-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第53页 |
