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红花多糖对肿瘤转移相关基因表达影响的实验研究

英文缩略词表第1-8页
中文摘要第8-10页
Abstract第10-12页
前言第12-15页
文献综述第15-41页
 1 恶性肿瘤的发病状况第15页
 2 中医对恶性肿瘤的治法第15-19页
   ·扶正固本法第15-16页
   ·活血化瘀法第16-18页
   ·以毒攻毒法第18-19页
 3 中药抗肿瘤作用机制的研究第19-26页
   ·直接细胞毒作用及对细胞增殖周期的影响第19-20页
   ·诱导凋亡第20-21页
   ·诱导细胞分化第21-22页
   ·抑制端粒酶活性第22-23页
   ·抑制肿瘤转移第23-24页
   ·抑制血管生成第24-25页
   ·逆转多药耐药作用第25-26页
 4 现代医学对肿瘤及肿瘤转移发生机制的研究现况第26-33页
   ·恶性肿瘤的发生机制第26-27页
   ·肿瘤转移的发生机制第27-33页
 5 CD44、MMP-9、TIMP-1、AMF与肿瘤转移的关系第33-36页
   ·CD44与肿瘤转移的关系第33-34页
   ·MMP-9与肿瘤转移的关系第34页
   ·TIMP-1与肿瘤转移的关系第34-35页
   ·AMF与肿瘤转移的关系第35-36页
 6 nm23-H1与肿瘤转移的关系第36-37页
 7 血管生成与肿瘤转移的关系第37-38页
 8 细胞因子与肿瘤转移的关系第38-39页
 9 红花多糖的研究现状第39-41页
实验研究第41-96页
 实验一 红花多糖对CD44、MMP-9、TIMP-1、AMF基因表达的影响第41-66页
  1 材料与方法第41-53页
   ·实验材料第41-43页
   ·实验方法第43-53页
  2. 实验结果第53-60页
   ·SPS对荷瘤小鼠肿瘤抑制率的影响第53页
   ·Real Time PCR检测SPS对荷瘤小鼠肿瘤组织CD44m RNA表达的影响第53-55页
   ·Real Time PCR检测SPS对荷瘤小鼠肿瘤组织MMP-9mRNA表达的影响第55-57页
   ·Real Time PCR检测SPS对荷瘤小鼠肿瘤组织TIMP-1 mRNA表达的影响第57-58页
   ·Real Time PCR检测SPS对荷瘤小鼠肿瘤组织AMF mRNA表达的影响第58-60页
  3 讨论第60-66页
   ·SPS对CD44基因表达的影响第60-61页
   ·SPS对MMP-9及TIMP-1基因表达的影响第61-64页
   ·SPS对AMF基因表达的影响第64-66页
 实验二 红花多糖对肿瘤转移抑制蛋白nm23-H1的影响第66-75页
  1 材料与方法第66-71页
   ·实验材料第66-67页
   ·实验方法第67-71页
  2 实验结果第71-73页
  3 讨论第73-75页
 实验三 红花多糖对鸡胚绒毛尿囊膜血管生成的影响第75-81页
  1 材料与方法第75-77页
   ·实验材料第75页
   ·实验方法第75-77页
  2 实验结果第77-79页
   ·SPS对CAM血管生成数量的调节作用第77-78页
   ·SPS对CAM血管生成面积的调节作用第78-79页
  3 讨论第79-81页
 实验四 红花多糖对肿瘤组织VEGF及MVD的影响第81-88页
  1 材料与方法第81-82页
   ·实验材料第81页
   ·实验方法第81-82页
  2 实验结果第82-85页
   ·SPS对肿瘤组织VEGF表达的影响第82-84页
   ·SPS对肿瘤组织MVD的影响第84-85页
  3 讨论第85-88页
 实验五 红花多糖对荷瘤小鼠血清IL-12、IL-10及TNF-α的影响第88-96页
  1 材料与方法第88-91页
   ·实验材料第88页
   ·实验方法第88-91页
  2 实验结果第91-93页
   ·SPS对荷瘤小鼠血清IL-12的影响第91-92页
   ·SPS对荷瘤小鼠血清IL-10的影响第92页
   ·SPS对荷瘤小鼠血清TNF-α的影响第92-93页
  3 讨论第93-96页
   ·SPS对荷瘤小鼠Th1/Th2免疫平衡的影响第93-94页
   ·SPS对荷瘤小鼠TNF-α的影响第94-96页
结论第96-97页
致谢第97-98页
参考文献第98-111页
攻读博士学位期间发表的论文及科研成果第111-113页
个人简历第113页

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