| 内容提要 | 第1-11页 |
| 英文缩略词 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-28页 |
| ·白囊耙齿菌概述 | 第12-13页 |
| ·白囊耙齿菌简介 | 第12页 |
| ·白囊耙齿菌的应用 | 第12-13页 |
| ·药用真菌的液体深层发酵概况 | 第13-18页 |
| ·药用真菌的发酵方式 | 第13-15页 |
| ·培养基组分对药用真菌液体深层发酵的影响 | 第15-17页 |
| ·发酵条件对药用真菌液体深层发酵的影响 | 第17-18页 |
| ·药用真菌多糖的研究进展 | 第18-26页 |
| ·多糖的提取和纯化过程 | 第19-20页 |
| ·多糖的结构特点和分析方法 | 第20-24页 |
| ·药用真菌多糖生物活性的研究进展 | 第24-26页 |
| ·立题背景和研究意义 | 第26-28页 |
| 第二章 白囊耙齿菌高产菌株的诱变选育 | 第28-58页 |
| ·引言 | 第28页 |
| ·材料与仪器 | 第28-31页 |
| ·菌株 | 第28页 |
| ·仪器设备 | 第28-29页 |
| ·试剂 | 第29-30页 |
| ·培养基 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-38页 |
| ·菌种活化及培养 | 第31页 |
| ·白囊耙齿菌产孢培养基的筛选 | 第31-33页 |
| ·期望函数的建立 | 第33-34页 |
| ·诱变选育 | 第34页 |
| ·目的菌株的筛选 | 第34页 |
| ·高产菌株稳定性检验 | 第34页 |
| ·ITS 鉴定 | 第34-36页 |
| ·RAPD 的差异性分析 | 第36-37页 |
| ·有效成分含量测定 | 第37-38页 |
| ·结果与讨论 | 第38-54页 |
| ·产孢培养基优化 | 第38-49页 |
| ·白囊耙齿菌产孢条件优化 | 第49页 |
| ·白囊耙齿菌的诱变筛选 | 第49-50页 |
| ·白囊耙齿菌高产菌株 ILN10 遗传稳定性研究 | 第50-51页 |
| ·白囊耙齿菌高产菌株 ILN10 与原始菌株 ITS 区序列比较分析 | 第51-52页 |
| ·白囊耙齿菌高产菌株 ILN10 与原始菌株的 RAPD 比较分析 | 第52-54页 |
| ·本章小结 | 第54-58页 |
| 第三章 白囊耙齿菌高产菌株 ILN10 发酵培养基的优化及发酵特性研究 | 第58-74页 |
| ·引言 | 第58页 |
| ·材料与仪器 | 第58-59页 |
| ·菌株 | 第58-59页 |
| ·仪器设备 | 第59页 |
| ·试剂 | 第59页 |
| ·培养基 | 第59页 |
| ·实验方法 | 第59-61页 |
| ·培养方法 | 第59页 |
| ·菌丝体干粉的制备 | 第59页 |
| ·实验设计 | 第59-61页 |
| ·白囊耙齿菌高产菌株 ILN10 的液体发酵特性研究 | 第61页 |
| ·分析方法 | 第61页 |
| ·结果与讨论 | 第61-70页 |
| ·碳源筛选 | 第61-62页 |
| ·氮源筛选 | 第62-63页 |
| ·Plackett Burman 实验设计 | 第63-64页 |
| ·最陡爬坡实验 | 第64-66页 |
| ·Box Behnken 实验设计 | 第66-68页 |
| ·期望值 D 的响应面分析 | 第68-69页 |
| ·验证实验 | 第69页 |
| ·白囊耙齿菌高产菌株 ILN10 的液体发酵特性 | 第69-70页 |
| ·本章小结 | 第70-74页 |
| 第四章 白囊耙齿菌高产菌株 ILN10 胞内多糖的分离纯化及初步结构分析 | 第74-88页 |
| ·引言 | 第74-75页 |
| ·材料与仪器 | 第75页 |
| ·菌株 | 第75页 |
| ·仪器设备 | 第75页 |
| ·试剂 | 第75页 |
| ·培养基 | 第75页 |
| ·实验方法 | 第75-79页 |
| ·ILN10 菌丝体的制备 | 第75-76页 |
| ·ILN10 胞内粗多糖的制备[170] | 第76页 |
| ·ILN10 胞内多糖的纯化 | 第76页 |
| ·ILN10 胞内多糖均一性和分子量的测定 | 第76-77页 |
| ·ILN10 胞内多糖的单糖组分分析 | 第77页 |
| ·ILN10 胞内多糖的紫外光谱检测 | 第77-78页 |
| ·ILN10 胞内多糖的红外光谱分析 | 第78页 |
| ·ILN10 胞内多糖的高碘酸氧化和 Smith 降解[171] | 第78页 |
| ·分析方法 | 第78-79页 |
| ·结果与讨论 | 第79-86页 |
| ·ILN10 胞内多糖的提取 | 第79页 |
| ·ILN10 胞内多糖的 DEAE 52 纤维素柱层析 | 第79-80页 |
| ·ILN10 胞内多糖的 Sephadex G100 柱层析 | 第80-81页 |
| ·ILN10 胞内多糖均一性和分子量的测定 | 第81-82页 |
| ·ILN10 胞内多糖的单糖组分分析 | 第82-83页 |
| ·ILN10 胞内多糖的紫外光谱检测 | 第83页 |
| ·ILN10 胞内多糖的红外光谱分析 | 第83-84页 |
| ·ILN10 胞内多糖的高碘酸氧化和 Smith 降解 | 第84-86页 |
| ·本章小结 | 第86-88页 |
| 第五章 白囊耙齿菌高产菌株 ILN10 胞内多糖体外生物活性研究 | 第88-98页 |
| ·引言 | 第88-89页 |
| ·材料与仪器 | 第89页 |
| ·仪器设备 | 第89页 |
| ·试剂 | 第89页 |
| ·细胞系 | 第89页 |
| ·实验方法 | 第89-90页 |
| ·胞内多糖的制备 | 第89页 |
| ·细胞培养 | 第89-90页 |
| ·细胞生长抑制实验 | 第90页 |
| ·结果与讨论 | 第90-96页 |
| ·白囊耙齿菌胞内多糖的抗肿瘤活性 | 第90-94页 |
| ·ILN10 胞内多糖对 HBZT 1 细胞体外增殖的影响 | 第94-96页 |
| ·本章小结 | 第96-98页 |
| 第六章 ILN3A 多糖组分抗大鼠肾炎活性研究 | 第98-114页 |
| ·引言 | 第98页 |
| ·材料与仪器 | 第98-99页 |
| ·胞内多糖 | 第98-99页 |
| ·仪器设备 | 第99页 |
| ·试剂 | 第99页 |
| ·实验动物及分组 | 第99页 |
| ·实验方法 | 第99-101页 |
| ·阳离子化小牛血清蛋白（C BSA）的制备 | 第99-100页 |
| ·模型制作 | 第100页 |
| ·实验动物情况观察 | 第100页 |
| ·24 h 尿白蛋白测定 | 第100页 |
| ·样本采集 | 第100页 |
| ·指标测定方法 | 第100-101页 |
| ·统计学处理 | 第101页 |
| ·结果与讨论 | 第101-111页 |
| ·大鼠的生长情况 | 第101-102页 |
| ·24 h 尿蛋白变化情况 | 第102-103页 |
| ·血清白蛋白测定结果 | 第103-104页 |
| ·总胆固醇测定结果 | 第104页 |
| ·甘油三酯测定结果 | 第104-105页 |
| ·尿素氮测定结果 | 第105页 |
| ·肌酐测定结果 | 第105-106页 |
| ·6keto PGF 测定结果 | 第106-107页 |
| ·IL 2、IL 2R、IL 6 和 TNF α测定结果 | 第107-108页 |
| ·核转录因子 NF κB 测定结果 | 第108页 |
| ·病理形态学观察 | 第108-111页 |
| ·本章小结 | 第111-114页 |
| 第七章 全文研究成果与展望 | 第114-118页 |
| ·主要研究成果 | 第114-116页 |
| ·后续工作展望 | 第116-118页 |
| 参考文献 | 第118-134页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第134-138页 |
| 致谢 | 第138-139页 |
| 摘要 | 第139-142页 |
| ABSTRACT | 第142-144页 |
