| 中文摘要 | 第1-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第12-20页 |
| ·立题背景 | 第12页 |
| ·乳酸菌胞外多糖抗肿瘤活性的研究进展 | 第12-18页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的生理功能 | 第13-14页 |
| ·乳酸菌胞外多糖抗肿瘤活性的研究 | 第14-15页 |
| ·乳酸菌胞外多糖抗肿瘤活性可能的作用机制 | 第15-18页 |
| ·本研究的主要内容 | 第18页 |
| ·本研究的主要目的与意义 | 第18-19页 |
| ·本研究拟采取的技术路线 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-32页 |
| ·材料 | 第20-21页 |
| ·受试物 | 第20页 |
| ·细胞株 | 第20页 |
| ·主要试剂 | 第20-21页 |
| ·主要仪器与设备 | 第21-22页 |
| ·方法 | 第22-31页 |
| ·冻存细胞的复苏与培养 | 第22页 |
| ·保加利亚乳杆菌胞外多糖样品的预处理 | 第22页 |
| ·保加利亚乳杆菌胞外多糖对人胃癌细胞生长抑制作用的研究 | 第22-23页 |
| ·保加利亚乳杆菌胞外多糖对人胃癌细胞诱导凋亡作用的研究 | 第23-27页 |
| ·保加利亚乳杆菌保外多糖对凋亡关键蛋白及基因表达的调控作用 | 第27-31页 |
| ·数据处理 | 第31-32页 |
| 3 结果与分析 | 第32-46页 |
| ·L.b.EPS对SGC-7901细胞生长抑制作用的研究 | 第32-33页 |
| ·L.b.EPS对SGC-7901细胞诱导凋亡作用的研究 | 第33-39页 |
| ·Giemsa染色法观察SGC-7901细胞形态学变化 | 第33页 |
| ·L.b.EPS对SGC-7901细胞超微结构的影响 | 第33-34页 |
| ·L.b.EPS对SGC-7901细胞DNA的影响 | 第34-35页 |
| ·TUNEL法检测细胞凋亡结果 | 第35-36页 |
| ·流式细胞仪检测细胞凋亡率结果 | 第36-39页 |
| ·L.b.EPS对凋亡关键蛋白及基因表达的调控作用 | 第39-46页 |
| ·免疫细胞化学方法检测相关蛋白表达结果 | 第39-41页 |
| ·实时定量-PCR方法检测相关基因表达结果 | 第41-46页 |
| 4 讨论 | 第46-54页 |
| ·L.b.EPS抑制人胃癌SGC-7901细胞增殖 | 第46-47页 |
| ·L.b.EPS诱导人胃癌SGC-7901细胞凋亡 | 第47-50页 |
| ·L.b.EPS诱导人胃癌SGC-7901细胞凋亡的形态学变化 | 第47-48页 |
| ·透射电镜观察凋亡细胞的超微结构 | 第48页 |
| ·L.b.EPS诱导SGC-7901细胞凋亡对DNA片段化的影响 | 第48-49页 |
| ·TUNEL法检测SGC-7901细胞凋亡 | 第49页 |
| ·流式细胞术检测SGC-7901细胞凋亡 | 第49-50页 |
| ·L.b.EPS对细胞凋亡关键蛋白及基因的调控作用 | 第50-54页 |
| ·免疫细胞化学技术的影响因素 | 第50页 |
| ·实时定量-PCR技术的影响因素 | 第50-51页 |
| ·p53、bcl-2、bax的调控作用 | 第51-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-61页 |
| 附录 | 第61-63页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第63页 |
