| 论文中部分缩写符号标注 | 第1-10页 |
| 摘要 | 第10-14页 |
| Abstract | 第14-19页 |
| 第一章 研究背景及实验设想 | 第19-39页 |
| ·组织工程概述 | 第19-23页 |
| ·组织工程的概念及发展 | 第19-21页 |
| ·组织工程对生物材料的挑战 | 第21-23页 |
| ·组织工程可降解支架材料及其与种子细胞的相互作用 | 第23-30页 |
| ·可降解材料及其降解机理 | 第23-26页 |
| ·可降解材料的分类及应用 | 第23-25页 |
| ·生物材料体内降解机理 | 第25-26页 |
| ·支架材料/细胞界面反应对细胞行为的影响 | 第26-30页 |
| ·材料/细胞界面 | 第26-29页 |
| ·降解产物/细胞界面 | 第29-30页 |
| ·理想的组织工程支架材料应有促血管化的功能 | 第30-36页 |
| ·血管化是组织工程成功的关键之一 | 第30-31页 |
| ·血管化过程、调节机制及体外研究方法 | 第31-34页 |
| ·支架材料血管化功能研究 | 第34-36页 |
| ·影响材料血管化功能的因素 | 第34-35页 |
| ·研究方法 | 第35-36页 |
| ·存在问题 | 第36-37页 |
| ·本研究设想 | 第37-39页 |
| ·目的意义 | 第37页 |
| ·主要内容 | 第37-38页 |
| ·方案设计 | 第38-39页 |
| 第二章 血管化功能表征体系的建立 | 第39-63页 |
| ·引言 | 第39页 |
| ·实验细胞的选择和检测指标 | 第39-40页 |
| ·血管化功能细胞水平定量表征方法 | 第40-60页 |
| ·MTT比色法定量检测细胞增殖 | 第40-41页 |
| ·细胞迁移体外定量检测(CMQM)的建立 | 第41-49页 |
| ·实验部分 | 第41-45页 |
| ·结果与讨论 | 第45-49页 |
| ·血管样结构定量检测(TLSQM)方法的建立 | 第49-60页 |
| ·实验部分 | 第49-50页 |
| ·结果与讨论 | 第50-60页 |
| ·血管化功能分子水平检测方法 | 第60-62页 |
| ·实时荧光定量RT-PCR检测mRNA表达 | 第60-61页 |
| ·荧光标记观察F-actin | 第61-62页 |
| ·本章小结 | 第62-63页 |
| 第三章 天然高分子壳聚糖降解产物的血管化功能及机理研究 | 第63-87页 |
| ·引言 | 第63-64页 |
| ·实验部分 | 第64-68页 |
| ·原料及仪器 | 第64-65页 |
| ·CS的体外降解 | 第65-67页 |
| ·样品制备 | 第65页 |
| ·降解实验 | 第65页 |
| ·材料本体及降解产物表征 | 第65-67页 |
| ·CS降解产物血管化功能表征 | 第67页 |
| ·细胞水平 | 第67页 |
| ·分子水平 | 第67页 |
| ·氨基葡萄糖的血管化功能表征 | 第67-68页 |
| ·D-氨基葡萄糖盐酸盐生理盐水溶液的配制和除菌 | 第67-68页 |
| ·氨基葡萄糖细胞水平血管化功能表征 | 第68页 |
| ·结果与讨论 | 第68-86页 |
| ·CS体外降解规律及机理 | 第68-73页 |
| ·样品制备 | 第68页 |
| ·降解规律 | 第68-72页 |
| ·降解机理 | 第72-73页 |
| ·CS降解产物的血管化功能 | 第73-80页 |
| ·细胞水平 | 第73-76页 |
| ·分子水平 | 第76-80页 |
| ·细胞水平和分子水平实验结果比较 | 第80页 |
| ·CS降解产物影响血管化机理(GS的作用) | 第80-86页 |
| ·GS的血管化功能 | 第80-85页 |
| ·CS降解产物中氨基葡萄糖单体对血管化影响的作用 | 第85-86页 |
| ·本章小结 | 第86-87页 |
| 第四章 合成高分子聚乳酸降解产物的血管化功能及机理研究 | 第87-113页 |
| ·引言 | 第87页 |
| ·实验部分 | 第87-90页 |
| ·原料及仪器 | 第87-88页 |
| ·PLA的体外降解 | 第88-89页 |
| ·样品制备 | 第88页 |
| ·降解实验 | 第88页 |
| ·材料本体及降解产物表征 | 第88-89页 |
| ·PLA降解产物血管化功能表征 | 第89-90页 |
| ·细胞水平 | 第89-90页 |
| ·分子水平 | 第90页 |
| ·乳酸分子的血管化功能表征 | 第90页 |
| ·乳酸生理盐水溶液的配制和除菌 | 第90页 |
| ·乳酸细胞水平血管化功能表征 | 第90页 |
| ·结果与讨论 | 第90-112页 |
| ·PLA体外降解规律及机理 | 第90-96页 |
| ·样品制备 | 第90-91页 |
| ·降解规律 | 第91-95页 |
| ·降解机理 | 第95-96页 |
| ·PLA降解产物的血管化功能 | 第96-105页 |
| ·细胞水平 | 第96-101页 |
| ·分子水平 | 第101-105页 |
| ·细胞水平和分子水平实验结果比较 | 第105页 |
| ·PLA降解产物影响血管化的机理(乳酸的作用) | 第105-112页 |
| ·乳酸的血管化功能 | 第106-110页 |
| ·PLA降解产物中乳酸分子对血管化影响的作用 | 第110-112页 |
| ·本章小结 | 第112-113页 |
| 第五章 生物陶瓷SCPP降解产物的血管化功能及机理研究 | 第113-135页 |
| ·引言 | 第113页 |
| ·实验部分 | 第113-117页 |
| ·原料及仪器 | 第113-114页 |
| ·SCPP的体外降解 | 第114页 |
| ·样品制备 | 第114页 |
| ·降解实验 | 第114页 |
| ·降解产物表征 | 第114页 |
| ·降解产物血管化功能表征 | 第114-116页 |
| ·细胞水平 | 第115页 |
| ·分子水平 | 第115-116页 |
| ·体内实验 | 第116页 |
| ·锶元素的血管化功能表征 | 第116-117页 |
| ·结果与讨论 | 第117-134页 |
| ·SCPP的在生理盐水中的降解规律 | 第117-119页 |
| ·SCPP降解产物的血管化功能 | 第119-129页 |
| ·细胞水平 | 第119-122页 |
| ·分子水平 | 第122-128页 |
| ·骨修复过程中血管长入情况 | 第128页 |
| ·细胞水平和分子水平实验结果比较 | 第128-129页 |
| ·体外实验和体内实验结果比较 | 第129页 |
| ·SCPP降解产物影响血管化的机理(锶元素的贡献) | 第129-134页 |
| ·锶元素的血管化功能(细胞水平) | 第129-133页 |
| ·SCPP降解产物中锶元素对促血管化功能的贡献 | 第133-134页 |
| ·本章小结 | 第134-135页 |
| 第六章 改性对材料/细胞界面上内皮细胞行为的影响 | 第135-171页 |
| ·引言 | 第135页 |
| ·实验部分 | 第135-141页 |
| ·原料及仪器 | 第135-136页 |
| ·CS膜表面改性对EC行为的影响 | 第136-138页 |
| ·样品制备与表征 | 第136-137页 |
| ·改性前后EC行为表征 | 第137-138页 |
| ·PLLA膜改性对EC行为的影响 | 第138-140页 |
| ·样品制备与表征 | 第138-139页 |
| ·改性前后EC行为表征 | 第139-140页 |
| ·CPP掺锶改性对EC行为的影响 | 第140-141页 |
| ·样品制备与表征 | 第140页 |
| ·掺锶前后EC行为表征 | 第140-141页 |
| ·结果与讨论 | 第141-169页 |
| ·海藻酸钠改性对CS膜表面EC行为的影响 | 第141-151页 |
| ·膜的制备 | 第141-142页 |
| ·改性对CS膜表面性质的影响 | 第142-143页 |
| ·改性对CS膜表面EC行为的影响及机理 | 第143-151页 |
| ·磷脂胆碱改性对PLA膜表面EC行为的影响 | 第151-162页 |
| ·膜的制备 | 第151-152页 |
| ·改性对PLA膜表面性质的影响 | 第152-155页 |
| ·改性对PLLA膜表面EC行为的影响及机理 | 第155-162页 |
| ·CPP掺锶改性对EC行为的影响 | 第162-169页 |
| ·掺锶对CPP表面形貌的影响 | 第162-163页 |
| ·掺锶对CPP在培养基中行为的影响 | 第163-165页 |
| ·掺锶对CPP表面EC行为的影响及机理 | 第165-169页 |
| ·本章小结 | 第169-171页 |
| 全文总结和创新点 | 第171-175页 |
| 建议 | 第175-176页 |
| 参考文献 | 第176-192页 |
| 附录 | 第192-204页 |
| 作者在读期间取得的科研成果 | 第204-206页 |
| 致谢 | 第206-207页 |
