| 摘要 | 第1-10页 |
| 1 文献综述 | 第10-20页 |
| 1．1 转抗虫基因植物的研究及应用现状 | 第10-12页 |
| 1．1．1 转抗虫基因植物的种类 | 第10-11页 |
| 1．1．1．1 转Bt抗虫基因植物 | 第10页 |
| 1．1．1．2 转植物源抗虫基因植物 | 第10-11页 |
| 1．1．1．3 转动物源抗虫基因植物 | 第11页 |
| 1．1．1．4 转第2代抗虫基因植物 | 第11页 |
| 1．1．2 转基因植物抗虫蛋白的表达及对靶标昆虫的抗虫性 | 第11-12页 |
| 1．2 转抗虫基因植物的生态风险评价 | 第12-20页 |
| 1．2．1 转抗虫基因植物通过基因漂移可能对自然界昆虫的影响 | 第12页 |
| 1．2．2 对非靶标生物和生物多样性的影晌 | 第12-14页 |
| 1．2．2．1 对非靶标昆虫的影响 | 第12-13页 |
| 1．2．2．2 对非靶标天敌的影响 | 第13-14页 |
| 1．2．3 转基因植物对土壤系统的影响 | 第14-17页 |
| 1．2．3．1 土壤中Bt毒蛋白的测定方法 | 第14页 |
| 1．2．3．2 Bt蛋白在土壤中的残留与降解 | 第14-16页 |
| 1．2．3．3 Bt毒素与土壤微粒的吸附和结合规律 | 第16-17页 |
| 1．2．3．4 土壤中Bt毒素的杀虫活性 | 第17页 |
| 1．2．4 害虫对转抗虫基因植物的抗性 | 第17-20页 |
| 1．2．4．1 害虫Bt毒素的抗性及抗性机制 | 第17-18页 |
| 1．2．4．2 棉铃虫对Bt棉花的抗性及其治理 | 第18-20页 |
| 2 引言 | 第20-21页 |
| 3 材料与方法 | 第21-29页 |
| 3．1 转Bt-crylAc基因棉花组织中杀虫蛋白在不同环境中的降解动态 | 第21页 |
| 3．1．1 供试棉花 | 第21页 |
| 3．1．2 试验设计 | 第21页 |
| 3．1．2．1 Bt棉花杀虫蛋白在土壤环境中的降解 | 第21页 |
| 3．1．2．2 Bt棉花杀虫蛋白的降解与温湿度的关系 | 第21页 |
| 3．1．2．3 Bt棉花杀虫蛋白的降解与光照的关系 | 第21页 |
| 3．2 土壤中Bt杀虫蛋白的测定方法的建立 | 第21-23页 |
| 3．2．1 试验材料 | 第21页 |
| 3．2．2 提取液配制： | 第21-22页 |
| 3．2．3 试验方法 | 第22-23页 |
| 3．3 Bt棉田土壤中CrylAc杀虫蛋白的监测 | 第23页 |
| 3．3．1 Bt棉田棉株根际土壤中杀虫蛋白的监测 | 第23页 |
| 3．3．2 多年种植Bt棉田土壤中杀虫蛋白的残留 | 第23页 |
| 3．4 转CryAc／CpTI双价抗虫水稻组织中CrylAc杀虫蛋白的表达及其根茬在大田环境下的降解动态 | 第23-25页 |
| 3．4．1 供试水稻 | 第23页 |
| 3．4．2 Bt根系分泌物中Bt杀虫蛋白的测定 | 第23-24页 |
| 3．4．2．1 土培收集法收集Bt水稻根系分泌物 | 第23-24页 |
| 3．4．2．2 水培收集法收集Bt水稻根系分泌物 | 第24页 |
| 3．4．3 Bt水稻主茎、根中CrylAc蛋白表达动态 | 第24页 |
| 3．4．4 转Bt基因水稻收获后根茬中Bt蛋白的降解试验 | 第24-25页 |
| 3．5 转CrylAc／CpTI双价基因水稻组织释放的CrylAc蛋白在土壤及水中的降解 | 第25页 |
| 3．5．1 供试土壤 | 第25页 |
| 3．5．2 供试水稻材料 | 第25页 |
| 3．5．3 试验设计 | 第25页 |
| 3．6 Bt-crylAc蛋白的ELISA定量测定 | 第25-27页 |
| 3．6．1 实验仪器 | 第25页 |
| 3．6．2 棉花组织及棉田土壤中Bt-CrylAc杀虫蛋白的定量测定 | 第25-26页 |
| 3．6．3 转CrylAc／CpTI双价基因水稻组织及水稻土中Bt杀虫蛋白的ELISA测定 | 第26-27页 |
| 3．7 棉花组织中总可溶性蛋白含量的测定 | 第27-28页 |
| 3．8 统计分析方法 | 第28-29页 |
| 4 结果与分析 | 第29-39页 |
| 4．1 转Bt-crylAc基因棉花组织中杀虫蛋白在不同环境中的降解动态 | 第29-32页 |
| 4．1．1 Bt棉花叶片中Bt毒蛋白的降解与温度的关系 | 第29页 |
| 4．1．2 Bt棉花叶片中Bt毒蛋白的降解与湿度的关系 | 第29-30页 |
| 4．1．3 Bt棉花叶片中Bt毒蛋白的降解与光照的关系 | 第30页 |
| 4．1．4 Bt棉花毒蛋白在土壤环境中的降解趋势 | 第30-32页 |
| 4．2 土壤中Bt杀虫蛋白的测定方法的建立 | 第32-33页 |
| 4．2．1 3种提取液对土壤中CrylAc蛋白提取效果的比较 | 第32页 |
| 4．2．2 土壤中CrylAc蛋白检测方法的建立 | 第32-33页 |
| 4．3 Bt棉田土壤中CrylAc杀虫蛋白的监测 | 第33页 |
| 4．4 转CryAc／CpTI双价抗虫水稻组织中CrylAc杀虫蛋白的表达及其根茬在大田环境下的降解动态 | 第33-36页 |
| 4．4．1 Bt稻根系中CrylAc蛋白的分泌 | 第33页 |
| 4．4．2 Bt水稻组织中CrylAc蛋白的时空表达 | 第33-35页 |
| 4．4．3 CrylAc／CpTI水稻根茬中Bt杀虫蛋白的降解动态 | 第35-36页 |
| 4．5 转CrylAc／CpTI双价基因水稻组织释放的CrylAc蛋白在土壤及水中的降解 | 第36-39页 |
| 4．5．1 Bt水稻叶片释放的杀虫蛋白在不同基质中的降解 | 第36-39页 |
| 4．5．1．1 Bt水稻叶片释放的CrylA蛋白在水中的降解 | 第36-37页 |
| 4．5．1．2 Bt水稻叶片释放的CrylA蛋白在土中的降解 | 第37-38页 |
| 4．5．1．3 CrylAc蛋白在非灭菌水和非灭菌土中降解过程的比较 | 第38-39页 |
| 5 结论与讨论 | 第39-42页 |
| 5．1 转Bt-crylAc基因棉花组织中杀虫蛋白在不同环境中的降解动态 | 第39页 |
| 5．2 Bt棉田土壤中CrylAc杀虫蛋白的监测 | 第39页 |
| 5．3 转CryAc／CpTI双价抗虫水稻组织中CrylAc杀虫蛋白的表达及其根茬在大田环境下的降解动态 | 第39-40页 |
| 5．4 转CrylAc／CpTI双价基因水稻组织释放的CrylAc蛋白在土壤及水中的降解 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-50页 |
| 英文摘要 | 第50-51页 |
