| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-14页 |
| 研究背景 | 第14-16页 |
| 第一章 E1A基因对人宫颈癌细胞周期的影响 | 第16-26页 |
| 摘要 | 第16-17页 |
| Abstract | 第17-18页 |
| 1 材料与方法 | 第18-20页 |
| 1．1 材料 | 第18页 |
| 1．1．1 细胞株 | 第18页 |
| 1．1．2 主要试剂 | 第18页 |
| 1．1．3 主要仪器 | 第18页 |
| 1．2 实验方法 | 第18-20页 |
| 1．2．1 细胞培养 | 第18-19页 |
| 1．2．2 基因载体PEI-磁性纳米粒的制备 | 第19页 |
| 1．2．3 基因转染 | 第19页 |
| 1．2．4 E1A基因表达的鉴定 | 第19页 |
| 1．2．5 流式细胞仪测细胞周期 | 第19-20页 |
| 1．3 统计学处理 | 第20页 |
| 2 结果 | 第20-23页 |
| 2．1 E1A基因的表达鉴定 | 第20-21页 |
| 2．2 流式细胞仪测细胞周期 | 第21-23页 |
| 3 讨论 | 第23-26页 |
| 第二章 PEI-Fe_3O_4纳米粒E1A基因对人宫颈癌细胞体外增殖的影响 | 第26-34页 |
| 摘要 | 第26-27页 |
| Abstract | 第27-28页 |
| 1 材料与方法 | 第28-29页 |
| 1．1 材料 | 第28页 |
| 1．1．1 细胞株 | 第28页 |
| 1．1．2 主要试剂 | 第28页 |
| 1．1．3 主要仪器 | 第28页 |
| 1．2 实验方法 | 第28-29页 |
| 1．2．1 PEI-Fe_3O_4纳米粒载体的制备、基囚转染、基因表达鉴定及细胞培养 | 第28页 |
| 1．2．2 转染前后人宫颈癌细胞HER-2／neu表达水平的检测 | 第28-29页 |
| 1．2．3 E1A基因对人宫颈癌细胞系生长速度的影响 | 第29页 |
| 1．2．4 软琼脂集落形成实验 | 第29页 |
| 1．3 统计学处理 | 第29页 |
| 2 结果 | 第29-31页 |
| 2．1 E1A基因对HER-2／neu基因的影响 | 第29-30页 |
| 2．2 E1A基因对Hela细胞生长的影响 | 第30-31页 |
| 2．3 软琼脂集落形成实验 | 第31页 |
| 3 讨论 | 第31-34页 |
| 第三章 E1A基因对人宫颈癌细胞放射敏感性的影响 | 第34-41页 |
| 摘要 | 第34-35页 |
| Abstract | 第35-36页 |
| 1 材料与方法 | 第36-37页 |
| 1．1 材料 | 第36-37页 |
| 1．1．1 细胞株 | 第36页 |
| 1．1．2 主要试剂 | 第36页 |
| 1．1．3 主要仪器 | 第36-37页 |
| 1．2 实验方法 | 第37页 |
| 1．2．1 PEI—Fe_3O_4纳米粒载体的制备、基因转染、基因表达鉴定及细胞培养 | 第37页 |
| 1．2．2 转染前后HER-2／neu表达水平的检测 | 第37页 |
| 1．2．3 E1A基因对人宫颈癌细胞放射敏感性的影响 | 第37页 |
| 1．3 统计学处理 | 第37页 |
| 2 结果 | 第37-38页 |
| 2．1 E1A基因对HER-2／neu基因表达的影响 | 第37页 |
| 2．2 E1A基因的放疗增敏作用 | 第37-38页 |
| 3 讨论 | 第38-41页 |
| 第四章 E1A基因对人宫颈癌细胞化疗药物敏感性的影响 | 第41-51页 |
| 摘要 | 第41-42页 |
| Abstract | 第42-43页 |
| 1 材料与方法 | 第43-44页 |
| 1．1 材料 | 第43页 |
| 1．1．1 细胞株 | 第43页 |
| 1．1．2 主要试剂 | 第43页 |
| 1．1．3 主要仪器 | 第43页 |
| 1．2 实验方法 | 第43-44页 |
| 1．2．1 PEI—Fe_3O_4纳米粒载体的制备、基因转染、基因表达鉴定及细胞培养 | 第43-44页 |
| 1．2．2 药物敏感性实验 | 第44页 |
| 1．3 统计学处理 | 第44页 |
| 2 结果 | 第44-48页 |
| 2．1 不同浓度的顺铂、5-氟尿嘧啶和紫杉醇对Hela-E1A、Hela和Hela-vect细胞的杀伤作用 | 第44-46页 |
| 2．2 同一浓度的顺铂、5-氟尿嘧啶和紫杉醇对Hela-E1A、Hela和Hela-vect细胞杀伤作用的动态观察 | 第46-48页 |
| 3 讨论 | 第48-51页 |
| 第五章 E1A基因对裸鼠移植瘤生长的影响 | 第51-62页 |
| 摘要 | 第51-52页 |
| Abstract | 第52-53页 |
| 1 材料与方法 | 第53-54页 |
| 1．1 材料 | 第53页 |
| 1．1．1 细胞株 | 第53页 |
| 1．1．2 动物 | 第53页 |
| 1．1．3 主要试剂 | 第53页 |
| 1．1．4 主要仪器 | 第53页 |
| 1．2 实验方法 | 第53-54页 |
| 1．2．1 PEI—Fe_3O_4纳米粒载体的制备、基因转染、基因表达鉴定及细胞培养 | 第53页 |
| 1．2．2 裸鼠致癌实验 | 第53页 |
| 1．2．3 免疫组织化学染色检测细胞凋亡及转染前后Survivin基因和Caspase-3基因的表达情况 | 第53-54页 |
| 1．3 统计学方法 | 第54页 |
| 2 结果 | 第54-60页 |
| 2．1 E1A基因对裸鼠出瘤时间、肿瘤体积和肿瘤生长曲线的影响 | 第54-55页 |
| 2．2 E1A基因对裸鼠肿瘤细胞凋亡的影响 | 第55-57页 |
| 2．3 E1A基因对活化的Caspase-3基因表达的影响 | 第57-58页 |
| 2．4 E1A基因对Survivin基因表达的影响 | 第58-60页 |
| 3 讨论 | 第60-62页 |
| 第六章 E1A基因对裸鼠移植瘤化疗敏感性的影响 | 第62-73页 |
| 摘要 | 第62-63页 |
| Abstract | 第63-64页 |
| 1 材料与方法 | 第64-65页 |
| 1．1 材料 | 第64页 |
| 1．1．1 细胞株 | 第64页 |
| 1．1．2 动物 | 第64页 |
| 1．1．3 主要试剂 | 第64页 |
| 1．1．4 主要仪器 | 第64页 |
| 1．2 实验方法 | 第64-65页 |
| 1．2．1 PEI-Fe3O4纳米粒的制备、基因表达鉴定及细胞培养 | 第64页 |
| 1．2．2 模拟E1A基因治疗的裸鼠实验 | 第64-65页 |
| 1．2．3 免疫组织化学染色检测细胞凋亡及转染前后Survivin基因和Caspase-3基因的表达情况 | 第65页 |
| 1．3 统计学方法 | 第65页 |
| 2 结果 | 第65-70页 |
| 2．1 E1A基因对裸鼠肿瘤化疗敏感性的影响 | 第65-66页 |
| 2．2 E1A基因对裸鼠肿瘤细胞凋亡的影响 | 第66-68页 |
| 2．3 E1A基因对活化的Caspase-3基因表达的影响 | 第68-69页 |
| 2．4 E1A基因对Survivin基因表达的影响 | 第69-70页 |
| 3 讨论 | 第70-73页 |
| 综述 | 第73-89页 |
| 1 E1A基因的结构及功能 | 第73-75页 |
| 1．1 腺病毒的一般特性 | 第73-74页 |
| 1．2 E1A基因的结构及功能 | 第74-75页 |
| 2 E1A基因与细胞转化的关系 | 第75页 |
| 3 E1A基因的抗肿瘤特性及机制 | 第75-83页 |
| 3．1 E1A对HER-2／neu过度表达的抑瘤作用 | 第75-78页 |
| 3．1．1 E1A下调HER-2／neu基因表达 | 第76-77页 |
| 3．1．2 E1A降低致瘤性 | 第77页 |
| 3．1．3 E1A抑制肿瘤转移 | 第77-78页 |
| 3．2 E1A基因对细胞凋亡的诱导 | 第78页 |
| 3．3 E1A基因激活p53基因诱导细胞凋亡 | 第78页 |
| 3．4 E1A基因与免疫系统的关系 | 第78-79页 |
| 3．5 E1A基因介导的旁杀伤效应 | 第79页 |
| 3．6 E1A基因对erbB-2高表达肿瘤的形成和转移的抑制作用 | 第79-80页 |
| 3．7 E1A基因对erbB-2非高表达肿瘤的形成和转移的抑制作用 | 第80页 |
| 3．8 E1A基因对肿瘤细胞放射治疗和化学治疗的增敏作用 | 第80-83页 |
| 3．8．1 E1A基因对肿瘤细胞化学治疗的增敏作用 | 第81页 |
| 3．8．2 E1A基因对肿瘤细胞放射治疗的增敏作用 | 第81-83页 |
| 4 E1A基因治疗的给药途径 | 第83-84页 |
| 5 E1A临床试用近况 | 第84页 |
| 6 E1A在肿瘤预防中的意义 | 第84-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第90页 |
