| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 1 引言 | 第9-20页 |
| ·ZIP 蛋白的命名及功能结构特点 | 第9页 |
| ·植物中的锌铁转运体基因的研究进展 | 第9-12页 |
| ·拟南芥(Arabidopsis)基因组中的ZIP 基因家族成员 | 第9-10页 |
| ·水稻(Oryza sativa L)中的ZIP 基因家族成员 | 第10-11页 |
| ·大麦(Hordeum vulgare)中的ZIP 基因家族成员 | 第11页 |
| ·苜蓿（Medicago truncatula）中的ZIP 基因家族成员 | 第11-12页 |
| ·玉米（Zea mays）中的ZIP 基因家族成员 | 第12页 |
| ·转基因技术简述 | 第12-13页 |
| ·植物转基因技术 | 第13-15页 |
| ·基因枪介导转化法 | 第13页 |
| ·农杆菌介导的遗传转化 | 第13页 |
| ·原生质融合法 | 第13-14页 |
| ·花粉通道法 | 第14-15页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第15-16页 |
| ·多聚酶链式反应（polymerase chain reaction, PCR） | 第15页 |
| ·实时荧光定量PCR（Real time PCR） | 第15页 |
| ·逆转录PCR（RT-PCR） | 第15-16页 |
| ·Southern/Northern 印迹杂交 | 第16页 |
| ·Western 杂交 | 第16页 |
| ·基因功能鉴定 | 第16-18页 |
| ·基因的时空表达特性 | 第17页 |
| ·基因的组织特异性 | 第17页 |
| ·生物信息学在基因功能预测方面的分析 | 第17-18页 |
| ·基因功能分析方法 | 第18页 |
| ·基因超表达研究 | 第18页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-33页 |
| ·实验材料 | 第20页 |
| ·植物受体材料 | 第20页 |
| ·用于转化的菌株，质粒载体，感受态细胞 | 第20页 |
| ·酶和其他试剂 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-33页 |
| ·玉米受体材料的初步筛选 | 第20-22页 |
| ·遗传转化载体的构建 | 第22-27页 |
| ·基因枪转化 | 第27-29页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第29-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-45页 |
| ·玉米转化受体材料的初步筛选 | 第33-37页 |
| ·广谱N6 培养基筛选结果 | 第33-34页 |
| ·农系531 专利培养基筛选结果 | 第34-35页 |
| ·广谱N6 组培培养基和农系531 专利培养基对农系85 的对比培养 | 第35-37页 |
| ·玉米遗传转化载体的构建 | 第37-39页 |
| ·玉米超表达载体pCAMBIA3301-ZmZIP4 的构建与鉴定 | 第37页 |
| ·玉米胚乳特异性表达载体pr-ZmZIP4 的构建与鉴定 | 第37-39页 |
| ·基因枪转化 | 第39-40页 |
| ·转化材料准备 | 第39-40页 |
| ·基因枪转化结果 | 第40页 |
| ·抗性愈伤的PCR 检测 | 第40-45页 |
| ·对pCAMBIA3301-ZmZIP4 和pr-ZmZIP4 的抗性愈伤进行PCR 检测 | 第40-42页 |
| ·对温室苗的抗除草剂检测 | 第42页 |
| ·转基因抗性愈伤成苗过程中缺锌胁迫培养 | 第42-44页 |
| ·对35s 组成型表达的转基因苗的RT-PCR 检测 | 第44-45页 |
| 4. 讨论 | 第45-48页 |
| ·玉米转化受体材料的筛选 | 第45-46页 |
| ·愈伤组织培养及植株再生 | 第45-46页 |
| ·组培中存在的问题 | 第46页 |
| ·基因枪转化玉米愈伤 | 第46-47页 |
| ·利用35s 超表达启动子转化玉米Zm-ZIP4 基因可能存在的问题 | 第47页 |
| ·胚乳特异性表载体Pr-ZmZIP4 表达核转化的实验后续工作的讨论 | 第47-48页 |
| 5 结论 | 第48-49页 |
| 附录 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-54页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第54-55页 |
| 作者简介 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
