| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-8页 |
| 一、 前言 | 第8-18页 |
| 1．1 本研究的立题思想 | 第8-9页 |
| 1．2 文献综述 | 第9-16页 |
| 1．2．1 Bt的分类 | 第9-11页 |
| 1．2．2 Bt的结构与功能 | 第11-12页 |
| 1．2．3 转Bt基因植物发展概况 | 第12-15页 |
| 1．2．4 转Bt基因抗虫植物所存在的问题 | 第15-16页 |
| 1．2．5 水稻抗虫转基因研究现状 | 第16页 |
| 1．3 ELISA概述 | 第16-18页 |
| 二、 材料与方法 | 第18-24页 |
| 2．1 实验材料 | 第18页 |
| 2．2 主要试剂 | 第18页 |
| 2．3 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2．4 实验方法 | 第19-24页 |
| 2．4．1 抗原制备 | 第19页 |
| 2．4．2 兔的免疫 | 第19页 |
| 2．4．3 抗血清的制备 | 第19页 |
| 2．4．4 抗体的纯化 | 第19-20页 |
| 2．4．5 抗体的酶标记 | 第20-21页 |
| 2．4．6 样品可溶性蛋白提取 | 第21页 |
| 2．4．7 Bradford法测定样品中可溶性蛋白浓度 | 第21-22页 |
| 2．4．8 直接法测定转基因水稻中Bt含量的方法 | 第22页 |
| 2．4．9 间接法测定转基因水稻中Bt含量 | 第22页 |
| 2．4．10 双抗夹心法测转基因水稻中Bt含量 | 第22-23页 |
| 2．4．11 ELISA测定数据的处理 | 第23-24页 |
| 三、 结果与分析 | 第24-39页 |
| 3．1 制备了高效价的CryIA（e）兔多抗 | 第24页 |
| 3．2 所制备的抗体分析 | 第24-26页 |
| 3．2．1 抗原抗体的免疫交叉反应 | 第24-26页 |
| 3．2．2 抗体的特异性 | 第26页 |
| 3．3 转基因水稻中Bt含量检测方法的确立 | 第26-30页 |
| 3．3．1 直接ELISA法 | 第26-27页 |
| 3．3．2 间接ELISA法 | 第27-29页 |
| 3．3．3 双抗夹心法ELISA | 第29-30页 |
| 3．4 双抗夹心法ELISA条件的确立 | 第30-34页 |
| 3．4．1 包被方法的确立 | 第30-31页 |
| 3．4．2 可溶性蛋白提取方法的选择 | 第31-33页 |
| 3．4．3 酶标抗体的浓度选择 | 第33页 |
| 3．4．4 Bt包被量的确定 | 第33-34页 |
| 3．4．5 反应条件的确定 | 第34页 |
| 3．5 双抗夹心法ELISA的重复性分析 | 第34-35页 |
| 3．5．1 ELISA重复性分析 | 第34页 |
| 3．5．2 Bt含量检测重复性分析 | 第34-35页 |
| 3．6 应用双抗夹心法ELISA研究转基因水稻中Bt蛋白的表达 | 第35-39页 |
| 3．6．1 转基因水稻中Bt含量与其抗虫性的关系 | 第35-36页 |
| 3．6．2 转基因水稻中Bt含量的时空变化 | 第36-39页 |
| 四、 讨论 | 第39-43页 |
| 4．1 抗体的有效性 | 第39页 |
| 4．2 检测方法的确立 | 第39-40页 |
| 4．3 检测中需注意的问题 | 第40-41页 |
| 4．4 转基因水稻中Bt含量与其抗虫性的关系 | 第41页 |
| 4．5 转基因水稻中Bt基因表达的时空变化 | 第41页 |
| 4．6 转基因水稻中Bt基因的沉默 | 第41-42页 |
| 4．7 将来可以继续进行的研究 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-46页 |
| 附录 | 第46-56页 |
| 1、 论文中所用Bt的氨基酸序列与DNA序列 | 第46-50页 |
| 1．1、 CryIA（e） | 第46-48页 |
| 1．1．1 氨基酸序列 | 第46页 |
| 1．1．2 核苷酸序列 | 第46-48页 |
| 1．2、 CryIA（c） | 第48-50页 |
| 1．2．1 氨基酸序列 | 第48-49页 |
| 1．2．2 核苷酸序列 | 第49-50页 |
| 2、 论文中所需溶液的配制方法 | 第50页 |
| 3、 IgG Purification Kit使用方法 | 第50-51页 |
| 4、 底物试剂盒使用方法 | 第51页 |
| 5、 转基因水稻中Bt含量与其抗虫性关系全部结果 | 第51-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
