摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
1 引言 | 第10-14页 |
·淹水胁迫对玉米的伤害及其原因 | 第10-11页 |
·植物在淹水逆境下的生理指标 | 第11-12页 |
·miRNA 在植物抗逆中的作用 | 第12-14页 |
2 材料与方法 | 第14-27页 |
·材料的处理和总RNA 的提取 | 第14-15页 |
·设备及试剂 | 第14页 |
·RNA 提取 | 第14-15页 |
·RNA 质量检测方法 | 第15-16页 |
·RNA 浓度测定 | 第15页 |
·琼脂糖电泳检测 | 第15-16页 |
·RNA 纯化 | 第16页 |
·RT-PCR | 第16-18页 |
·real-time PCR | 第18-22页 |
·样品的RNA 抽提 | 第18-19页 |
·RNA 质量检测 | 第19页 |
·cDNA 合成 | 第19页 |
·实时定量PCR(real-time PCR) | 第19-22页 |
·激素的测定 | 第22-25页 |
·原理 | 第22页 |
·材料、试剂及设备 | 第22-23页 |
·操作步骤 | 第23-25页 |
·SOD 酶活及同工酶分析 | 第25-27页 |
·试剂配制 | 第25页 |
·酶液提取 | 第25页 |
·显色反应 | 第25页 |
·SOD 活性测定与计算 | 第25-26页 |
·同工酶分析 | 第26-27页 |
3 结果分析 | 第27-33页 |
·淹水处理不同时期 Mo17 的不定根条数 | 第27-28页 |
·RNA 含量和质量的检测 | 第28-29页 |
·miRNA 的 real-time PCR 分析 | 第29页 |
·靶基因表达分析 | 第29-30页 |
·内源植物激素IAA 和ABA 含量分析 | 第30-31页 |
·SOD 的表达分析 | 第31-33页 |
4 讨论 | 第33-37页 |
·淹水引起不定根的形成的分子机理 | 第33-35页 |
·ABA 的含量的改变影响了GH3 的表达,从而影响了IAA-ABA 动态平衡 | 第33-34页 |
·IAA 调控 ra2 基因的表达和不定根的形成 | 第34-35页 |
·SOD 的表达变化可能增强了植株的抗氧化能力 | 第35-37页 |
5 结论 | 第37-38页 |
6 参考文献 | 第38-42页 |
7 作者简介 | 第42-43页 |
8 致谢 | 第43页 |