| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-12页 |
| 第一章前言 | 第12-20页 |
| 1.1电致化学发光（Electrochemiluminescence,ECL） | 第12-13页 |
| 1.1.1ECL发光原理 | 第12-13页 |
| 1.1.2ECL影响因素 | 第13页 |
| 1.2生物传感策略 | 第13-15页 |
| 1.2.1基于ECL的传感策略 | 第13-14页 |
| 1.2.2基于荧光的传感策略 | 第14页 |
| 1.2.3基于FRET的传感策略 | 第14页 |
| 1.2.4基于原子力显微镜的传感策略 | 第14-15页 |
| 1.2.5基于SERS的传感策略 | 第15页 |
| 1.3核酸检测信号放大策略 | 第15-17页 |
| 1.3.1传统放大技术 | 第15-16页 |
| 1.3.2杂交链式反应（HCR） | 第16页 |
| 1.3.3DNA纳米结构 | 第16页 |
| 1.3.4DNA酶（DNAzymes） | 第16-17页 |
| 1.3.5DNA步行器（DNAWalker） | 第17页 |
| 1.4本论文的选题背景及意义、研究内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1选题背景与意义 | 第17-18页 |
| 1.4.2研究内容 | 第18-19页 |
| 1.5展望 | 第19-20页 |
| 第二章基于新型DNA纳米管的多功能电化学发光和电化学传感器检测甲基转移酶和黄曲霉毒素B1 | 第20-40页 |
| 2.1前言 | 第20-21页 |
| 2.2实验部分 | 第21-24页 |
| 2.2.1试剂和仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.2金纳米粒子（AuNPs）的制备 | 第22页 |
| 2.2.3DNA纳米管（DNANTs）的制备 | 第22页 |
| 2.2.4DNANTs-MB和DNANTs-Ru（phen）32+配合物的制备 | 第22-23页 |
| 2.2.5构建ECL生物传感器 | 第23页 |
| 2.2.6电化学生物传感器的构建 | 第23页 |
| 2.2.7凝胶电泳法测定甲基化 | 第23-24页 |
| 2.2.8DNANTs的透射电子显微镜（TEM）表征 | 第24页 |
| 2.2.9从花生样品中提取AFB1 | 第24页 |
| 2.3结果和讨论 | 第24-39页 |
| 2.3.1基于DNANTs信号探针的ECL和电化学检测甲基化酶和黄曲霉毒素B1的原理 | 第24-25页 |
| 2.3.2AuNPs的表征 | 第25-26页 |
| 2.3.3DNANTs的表征 | 第26-27页 |
| 2.3.4DNANTs和发夹DNA甲基化的PAGE分析 | 第27页 |
| 2.3.5Ru（phen）32+（或MB）与DNANTs之间相互作用的表征 | 第27-28页 |
| 2.3.6生物传感器制备的表征 | 第28-29页 |
| 2.3.7电化学生物传感器检测DamMTase和AFB1的可行性 | 第29-30页 |
| 2.3.8实验条件的优化 | 第30-31页 |
| 2.3.9检测DamMTase的电化学生物传感器 | 第31页 |
| 2.3.10AFB1的电化学检测 | 第31-32页 |
| 2.3.11电化学生物传感器的选择性研究 | 第32-33页 |
| 2.3.12ECL生物传感器的可行性 | 第33-34页 |
| 2.3.13实验条件的优化 | 第34-35页 |
| 2.3.14用于检测DamMTase的ECL生物传感器 | 第35页 |
| 2.3.15用于检测AFB1的ECL生物传感器 | 第35-36页 |
| 2.3.16ECL生物传感器的选择性研究 | 第36-37页 |
| 2.3.17本方法在实际样本分析中的应用 | 第37-39页 |
| 2.4结论 | 第39-40页 |
| 第三章基于Ag（Ⅰ）离子增强或AgNCs淬灭电化学发光的多功能生物传感器检测凝血酶和miRNA | 第40-59页 |
| 3.1前言 | 第40-41页 |
| 3.2实验部分 | 第41-44页 |
| 3.2.1试剂和仪器 | 第41-42页 |
| 3.2.2DNA和TB的预处理 | 第42页 |
| 3.2.3金纳米粒子（AuNPs）的制备 | 第42页 |
| 3.2.4CdSe量子点的制备 | 第42-43页 |
| 3.2.5MSN和PMSN的制备 | 第43页 |
| 3.2.6凝胶电泳测定SPCR扩增 | 第43页 |
| 3.2.7H3-CdSe量子点的制备 | 第43页 |
| 3.2.8构建用于TB检测的ECL生物传感器 | 第43-44页 |
| 3.2.9构建用于检测miRNA-21的ECL生物传感器 | 第44页 |
| 3.2.10人血清中凝血酶的测定 | 第44页 |
| 3.2.11人血清中miRNA-21的测定 | 第44页 |
| 3.3结果与讨论 | 第44-57页 |
| 3.3.1AuNPs的表征 | 第46页 |
| 3.3.2CdSeQDs的表征 | 第46-47页 |
| 3.3.3AgNCs的表征 | 第47页 |
| 3.3.4聚丙烯凝胶电泳表征SPCR | 第47-48页 |
| 3.3.5MSN的表征 | 第48-49页 |
| 3.3.6AFM表征电极组装过程 | 第49-50页 |
| 3.3.7CdSe量子点的信号强度和稳定性 | 第50页 |
| 3.3.8ECL生物传感器检测TB和miRNA-21的可行性 | 第50-52页 |
| 3.3.9实验条件的优化 | 第52-53页 |
| 3.3.10ECL检测TB | 第53-54页 |
| 3.3.11ECL检测miRNA-21 | 第54-55页 |
| 3.3.12ECL生物传感器的选择性 | 第55-56页 |
| 3.3.13所提出的生物传感器与其他报道的TB和MiRNA-21测定方法的比较 | 第56页 |
| 3.3.14本方法在实际样本分析中的应用 | 第56-57页 |
| 3.4结论 | 第57-59页 |
| 第四章基于DNA酶放大信号和步行器诱导变构开关的多功能电化学发光和光电化学传感器检测GSH | 第59-77页 |
| 4.1前言 | 第59-60页 |
| 4.2实验部分 | 第60-64页 |
| 4.2.1试剂和仪器 | 第60-61页 |
| 4.2.2金纳米粒子（AuNPs）的制备 | 第61-62页 |
| 4.2.3MnO2纳米片的制备 | 第62页 |
| 4.2.4CdS:MnQDs和CdS:Mn-SA复合物的制备 | 第62页 |
| 4.2.5DNA的预处理 | 第62页 |
| 4.2.6凝胶电泳分析 | 第62页 |
| 4.2.7CdS:MnQDs的FL和ECL光谱的测量 | 第62-63页 |
| 4.2.8GSH将MnO2纳米片还原成Mn2+ | 第63页 |
| 4.2.9Mn2+驱动的DNAzyme辅助循环扩增反应 | 第63页 |
| 4.2.10ECL和PEC生物传感器的构建 | 第63页 |
| 4.2.11检测人血清样品中的谷胱甘肽 | 第63-64页 |
| 4.3结果与讨论 | 第64-76页 |
| 4.3.1基于DNAWalker诱导的变构开关和信号放大技术,对GSH进行多功能电化学发光和光电化学检测原理 | 第64-65页 |
| 4.3.2金纳米颗粒的表征 | 第65页 |
| 4.3.3MnO2纳米片的表征 | 第65-66页 |
| 4.3.4CdS:Mn量子点的表征 | 第66-67页 |
| 4.3.5聚丙烯酰胺凝胶电泳（PAGE）分析的表征 | 第67页 |
| 4.3.6生物传感器制造的表征 | 第67-68页 |
| 4.3.7生物传感器制造的原子力显微镜表征 | 第68-69页 |
| 4.3.8CdS:MnQDs-SA复合物的表征 | 第69页 |
| 4.3.9CdS:MnQDs的ECL和PEC特性 | 第69-70页 |
| 4.3.10ECL生物传感器用于GSH检测的可行性 | 第70页 |
| 4.3.11实验条件的优化 | 第70-71页 |
| 4.3.12生物传感器对GSH的ECL检测 | 第71-72页 |
| 4.3.13用于GSH检测的ECL生物传感器的稳定性和选择性 | 第72-73页 |
| 4.3.14PEC生物传感器用于检测GSH的可行性 | 第73页 |
| 4.3.15用PEC生物传感平台检测GSH | 第73-74页 |
| 4.3.16用于GSH检测的PEC生物传感器的稳定性和选择性 | 第74-75页 |
| 4.3.17本实验中的生物传感器与其他报道的GSH测定方法的比较 | 第75页 |
| 4.3.18检测人血清样品中的GSH | 第75-76页 |
| 4.4结论 | 第76-77页 |
| 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第91-92页 |
