| 中文摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略词表 | 第9-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-18页 |
| 第二章 材料与方法 | 第18-41页 |
| ·材料和仪器 | 第18-20页 |
| ·实验动物 | 第18页 |
| ·病毒 | 第18页 |
| ·细胞株 | 第18页 |
| ·主要实验仪器 | 第18-19页 |
| ·主要实验试剂 | 第19-20页 |
| ·实验方法 | 第20-41页 |
| ·培养液的配置 | 第20-22页 |
| ·神经胶质细胞的制备与分离培养 | 第22-23页 |
| ·神经胶质细胞纯度检测 | 第23-25页 |
| ·传代细胞培养 | 第25-26页 |
| ·病毒增殖培养 | 第26-27页 |
| ·半定量RT-PCR检测促炎因子和趋化因子mRNA的水平 | 第27-30页 |
| ·Coxsackievirus感染星形胶质细胞后IP-10 水平的检测 | 第30-31页 |
| ·Coxsackievirus感染星形胶质细胞后上清中病毒滴度测定 | 第31-32页 |
| ·Coxsackievirus感染星形细胞后细胞存活率检测 | 第32-33页 |
| ·IP-10 真核细胞表达载体的构建 | 第33-39页 |
| ·获得目的基因 | 第33-36页 |
| ·载体构建 | 第36-39页 |
| ·转染原代星形细胞 | 第39-40页 |
| ·检测转染星形胶质细胞后IP-10 表达量 | 第40-41页 |
| 第三章 结果 | 第41-52页 |
| ·Balb/c小鼠脑胶质细胞的形态学观察 | 第41页 |
| ·星形胶质细胞和小胶质细胞纯度鉴定 | 第41-43页 |
| ·Vero 细胞形态学观察 | 第43页 |
| ·Coxsackievirus感染星形胶质细胞后细胞形态变化 | 第43-44页 |
| ·半定量RT-PCR检测促炎因子及趋化因子mRNA水平 | 第44-47页 |
| ·Cosackie virus感染星形胶质细胞后上清液中IP-10 水平 | 第47-49页 |
| ·Coxsackievirus 在星形胶质细胞中的增殖动力学 | 第49页 |
| ·Cosackie virus感染星形胶质细胞后细胞存活率 | 第49-50页 |
| ·IP-10 表达载体构建 | 第50-51页 |
| ·转染星形胶质细胞后上清中IP-10 | 第51-52页 |
| 第四章 讨论 | 第52-55页 |
| ·星形胶质细胞的体外培养及免疫荧光鉴定 | 第52-53页 |
| ·Coxsackeivirus 感染神经胶质细胞 | 第53-54页 |
| ·Coxsakcievirus感染神经胶质细胞细胞因子变化 | 第54-55页 |
| 第五章 结论 | 第55-56页 |
| 第六章 参考文献 | 第56-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 个人简历 | 第63-64页 |
| 发表文章 | 第64-76页 |
