| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第13-36页 |
| 1.1 MicroRNA简介 | 第13-15页 |
| 1.1.1 MicroRNA的定义 | 第13页 |
| 1.1.2 MiRNA的功能 | 第13-14页 |
| 1.1.3 MiRNA的作用方式 | 第14-15页 |
| 1.2 MiRNA与心梗疾病 | 第15-19页 |
| 1.2.1 急性心肌梗死 | 第15页 |
| 1.2.2 MiRNA与急性心肌梗死 | 第15-19页 |
| 1.2.2.1 MiRNA在心肌细胞凋亡中的特殊功能 | 第15-16页 |
| 1.2.2.2 MiRNA如何调控心肌梗死 | 第16页 |
| 1.2.2.3 MiRNA调节心肌梗死时心肌细胞的再生 | 第16-18页 |
| 1.2.2.4 MiRNA作为心肌梗死标志物和临床治疗靶点 | 第18-19页 |
| 1.3 MiRNA检测 | 第19-29页 |
| 1.3.1 核酸放大技术 | 第19-24页 |
| 1.3.1.1 杂化链式扩增反应 | 第19-20页 |
| 1.3.1.2 链置换放大 | 第20-21页 |
| 1.3.1.3 滚环扩增放大 | 第21-23页 |
| 1.3.1.4 酶催化放大 | 第23-24页 |
| 1.3.1.5 聚合酶链反应 | 第24页 |
| 1.3.2 光谱检测方法 | 第24-29页 |
| 1.3.2.1 荧光检测 | 第25-26页 |
| 1.3.2.2 表面增强拉曼光谱检测 | 第26-28页 |
| 1.3.2.3 化学发光检测 | 第28-29页 |
| 1.3.2.4 电致化学发光检测 | 第29页 |
| 1.4 本文选题及主要研究内容 | 第29-32页 |
| 参考文献 | 第32-36页 |
| 第2章 球形核酸酶促进的化学发光miRNA手机成像 | 第36-55页 |
| 2.1 引言 | 第36-38页 |
| 2.2 实验部分 | 第38-40页 |
| 2.2.1 实验试剂 | 第38页 |
| 2.2.2 仪器表征 | 第38-39页 |
| 2.2.3 聚丙烯酸胺凝胶电泳 | 第39页 |
| 2.2.4 SNAs和SNAzymes的制备 | 第39页 |
| 2.2.5 优化实验条件 | 第39页 |
| 2.2.6 智能手机CL成像 | 第39-40页 |
| 2.2.7 miRNA检测过程 | 第40页 |
| 2.3 结果与分析 | 第40-48页 |
| 2.3.1 合成SNAzymes的结构与性能 | 第40-42页 |
| 2.3.2 SNAzyme促进的miRNA化学发光检测平台的设计与优化 | 第42-44页 |
| 2.3.3 利用SNAzymes与智能手机进行CL成像 | 第44-45页 |
| 2.3.4 真实样品中目标miRNA的CL检测与成像 | 第45-48页 |
| 2.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-55页 |
| 第3章 目标诱导的放大负载球形核酸酶纳米催化剂用于超灵敏电致化学发光放大检测miRNA | 第55-66页 |
| 3.1 引言 | 第55-56页 |
| 3.2 实验部分 | 第56-58页 |
| 3.2.1 实验材料和试剂 | 第56-57页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第57页 |
| 3.2.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第57页 |
| 3.2.4 SNAzymes的制备 | 第57-58页 |
| 3.2.5 ECL检测miRNA的程序 | 第58页 |
| 3.3 结果与分析 | 第58-63页 |
| 3.3.1 生物传感器的表征 | 第58-60页 |
| 3.3.2 HCR及SNAzyme放大效果研究 | 第60页 |
| 3.3.3 多个miRNA的ECL分析 | 第60-61页 |
| 3.3.4 miRNA生物传感器的稳定性、重现性和选择性 | 第61-62页 |
| 3.3.5 实际应用 | 第62-63页 |
| 3.6 本章小结 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-66页 |
| 第4章 组分可调的中空Au/Ag SERS纳米探针结合目标物催化发夹环组装用于miRNA的三重放大检测 | 第66-81页 |
| 4.1 引言 | 第66-68页 |
| 4.2 实验部分 | 第68-70页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第68页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第68页 |
| 4.2.3 等离子体芯片的合成 | 第68-69页 |
| 4.2.4 空心金/银纳米球的合成 | 第69页 |
| 4.2.5 SERS探针的合成 | 第69页 |
| 4.2.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第69页 |
| 4.2.7 miRNA的检测技术 | 第69-70页 |
| 4.3 结果与分析 | 第70-76页 |
| 4.3.1 中空Au/Ag双金属SERS探针的制备及表征 | 第70-73页 |
| 4.3.2 结合CHA的miRNA超灵敏SERS传感器 | 第73-75页 |
| 4.3.3 血清样本SERS分析 | 第75-76页 |
| 4.4 本章小结 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-81页 |
| 第5章 Exo Ⅲ促进的级联反应用于超灵敏SERS检测心梗疾病相关核酸标志物 | 第81-96页 |
| 5.1 引言 | 第81-82页 |
| 5.2 实验部分 | 第82-84页 |
| 5.2.1 实验试剂 | 第82页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第82-83页 |
| 5.2.3 制备等离子共振金纳米片 | 第83页 |
| 5.2.4 等离子体芯片的增强因子(EF) | 第83页 |
| 5.2.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第83页 |
| 5.2.6 Exo Ⅲ促进的目标循环级联反应 | 第83-84页 |
| 5.2.7 等离子体芯片上的DNA检测 | 第84页 |
| 5.3 结果与分析 | 第84-91页 |
| 5.3.1 基于SERS的核酸扩增检测的设计与原理 | 第84-85页 |
| 5.3.2 Exo Ⅲ催化HCR反应的可行性分析 | 第85-87页 |
| 5.3.3 等离子体芯片的特性 | 第87-88页 |
| 5.3.4 SERS生物传感 | 第88-90页 |
| 5.3.5 实际样品分析 | 第90-91页 |
| 5.4 本章小结 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-96页 |
| 总结与展望 | 第96-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第100页 |
