| 中文摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 前言 | 第7-9页 |
| 材料和方法 | 第9-19页 |
| 一、实验材料 | 第9-13页 |
| 1. 细胞及培养 | 第9页 |
| 2. 实验器材 | 第9-10页 |
| 3. 实验试剂 | 第10-11页 |
| 4. 相关实验试剂配制 | 第11-13页 |
| 二、实验方法 | 第13-19页 |
| 1. 制作CSE提取装置 | 第13页 |
| 2. 细胞实验 | 第13-18页 |
| 2.1 确定CSE工作浓度 | 第13-14页 |
| 2.2 细胞处理 | 第14-15页 |
| 2.3 超高速离心法提取外泌体 | 第15-16页 |
| 2.4 外泌体鉴定 | 第16-17页 |
| 2.5 检测细胞及外泌体中的IL-1β含量 | 第17-18页 |
| 3. 结果判断和统计学分析 | 第18-19页 |
| 结果 | 第19-25页 |
| 一、CSE的制备及工作浓度确定 | 第19-20页 |
| 1. CSE的制备 | 第19页 |
| 2. CSE工作浓度确定 | 第19-20页 |
| 二、CSE能刺激THP-1细胞产生外泌体 | 第20-22页 |
| 1. 透射电子显微镜检测外泌体 | 第20-21页 |
| 2. Western-Blot检测外泌体表面标志物 | 第21-22页 |
| 三、CSE刺激THP-1细胞产生的外泌体中含有IL-1β | 第22-23页 |
| 四、褪黑素可通过抑制NLRP3炎性小体相关信号通路抑制IL-1β通过外泌体的释放 | 第23-25页 |
| 讨论 | 第25-28页 |
| 结论 | 第28页 |
| 临床意义 | 第28页 |
| 创新 | 第28页 |
| 不足 | 第28-29页 |
| 参考文献 | 第29-34页 |
| 缩略词表 | 第34-36页 |
| 致谢 | 第36-37页 |
