前言 | 第6-8页 |
中文摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-11页 |
1 材料及方法 | 第12-24页 |
1.1 实验材料 | 第12-13页 |
1.1.1 主要仪器 | 第12-13页 |
1.1.2 主要试剂 | 第13页 |
1.2 实验方法 | 第13-24页 |
1.2.1 动物分组及处理 | 第13-14页 |
1.2.2 细胞培养及干预 | 第14页 |
1.2.3 CQ8单克隆抗体的制备 | 第14-17页 |
1.2.4 ELISA测量抗体滴度 | 第17-19页 |
1.2.5 动物体重、血糖及血压测量 | 第19页 |
1.2.6 动物24h尿液收集及分析,动物肾功能测量 | 第19-20页 |
1.2.7 动物组织取材及处理 | 第20页 |
1.2.8 病理染色检测及统计 | 第20-22页 |
1.2.9 CCK-8实验测定细胞活性 | 第22页 |
1.2.10 油红O染色 | 第22页 |
1.2.11 qRT-PCR检测小鼠肾脏及细胞各指标mRNA表达 | 第22-24页 |
1.3 统计学方法 | 第24页 |
2 结果 | 第24-32页 |
2.1 CQ8抗体可降低db/db小鼠体重、血压及尿蛋白水平,改善肾功能 | 第24-26页 |
2.2 CQ8抗体可明显减轻db/db小鼠肾脏病理改变 | 第26-27页 |
2.3 CQ8抗体可改善db/db小鼠肾脏的脂肪酸氧化及自噬功能 | 第27-28页 |
2.4 HK-2细胞活性随高糖刺激时间延长逐渐降低,而CQ8抗体可显著提升细胞活性 | 第28-30页 |
2.5 高糖诱导HK-2细胞脂肪酸氧化及自噬功能缺陷,细胞内脂滴沉积,CQ8抗体可有效改善这些病变 | 第30-32页 |
讨论 | 第32-33页 |
参考文献 | 第33-37页 |
综述 | 第37-54页 |
参考文献 | 第46-54页 |
致谢 | 第54页 |