螺旋藻硫酸多糖（SPS）提纯工艺优化及体外抗氧化和抗稻瘟霉活性研究
| 致谢 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-21页 |
| 1 生物活性多糖的提取技术 | 第13-14页 |
| 2 粗多糖的脱蛋白技术 | 第14页 |
| 3 硫酸多糖(SP)的生物学活性研究进展 | 第14-21页 |
| ·抗氧化活性 | 第15-17页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第17-18页 |
| ·抗凝血活性 | 第18-19页 |
| ·抗HIV活性 | 第19-21页 |
| 第二章 螺旋藻多糖硫酸基团含量测定方法的优化 | 第21-34页 |
| 1 材料与方法 | 第21-22页 |
| ·材料 | 第21页 |
| ·试剂与仪器 | 第21页 |
| ·螺旋藻多糖的提取 | 第21-22页 |
| ·硫酸基团含量的测定 | 第22页 |
| 2 结果与讨论 | 第22-34页 |
| ·硫酸基团测定条件的优化 | 第22-28页 |
| ·螺旋藻多糖水解条件的优化 | 第28-32页 |
| ·利用所建方法测定螺旋藻多糖硫酸基团含量 | 第32-34页 |
| 第三章 螺旋藻多糖提取工艺优化 | 第34-41页 |
| 1 材料与方法 | 第34-37页 |
| ·材料 | 第34页 |
| ·试剂与仪器 | 第34页 |
| ·螺旋藻粗多糖的提取 | 第34-35页 |
| ·多糖含量的测定 | 第35-36页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第36页 |
| ·硫酸基团含量的测定 | 第36-37页 |
| 2 结果与讨论 | 第37-41页 |
| ·螺旋藻多糖粗提条件的优化 | 第37-38页 |
| ·螺旋藻多糖醇沉条件的优化 | 第38-41页 |
| 第四章 SPS的纯化和光谱学特征分析 | 第41-51页 |
| 1 材料与方法 | 第41-44页 |
| ·材料 | 第41页 |
| ·试剂与仪器 | 第41-42页 |
| ·多糖、蛋白质和硫酸基团含量测定 | 第42页 |
| ·Sevag法脱蛋白 | 第42页 |
| ·TCA法脱蛋白 | 第42页 |
| ·阴离子交换层析 | 第42-43页 |
| ·SPS提取和分离工艺流程 | 第43-44页 |
| ·紫外-可见光谱分析 | 第44页 |
| ·IR光谱分析 | 第44页 |
| 2 结果与讨论 | 第44-51页 |
| ·螺旋藻粗多糖脱蛋白方法的选择和优化 | 第44-46页 |
| ·SPS的分离纯化 | 第46-48页 |
| ·SPS的光谱学分析 | 第48-51页 |
| 第五章 SPS体外抗氧化及抗稻瘟霉活性研究 | 第51-63页 |
| 1 材料与方法 | 第51-53页 |
| ·材料 | 第51页 |
| ·主要仪器 | 第51-52页 |
| ·多糖、蛋白质和硫酸基团含量测定 | 第52页 |
| ·清除羟自由基(·OH)能力测定 | 第52页 |
| ·清除超氧阴离子(O_2~-)能力测定 | 第52-53页 |
| ·清除单线态氧(~1O_2)能力测定 | 第53页 |
| ·SAS分析 | 第53页 |
| ·抗稻瘟霉活性测定 | 第53页 |
| 2 结果与讨论 | 第53-63页 |
| ·SPS体外抗氧化能力研究 | 第53-57页 |
| ·SPS体外抗稻瘟霉活性研究 | 第57-60页 |
| ·SPS的生物学活性与分子特征的相关性分析 | 第60-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
