| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第1章 绪论 | 第8-18页 |
| 1.1 Cytb_6f的结构、功能及其研究进展 | 第8-10页 |
| 1.1.1 Cytb_6f的组成与结构 | 第8-9页 |
| 1.1.2 Cytb_6f的生理功能 | 第9-10页 |
| 1.1.3 Cytb_6f的研究进展 | 第10页 |
| 1.2 蛋白的制备 | 第10-13页 |
| 1.2.1 材料选择及预处理 | 第11页 |
| 1.2.2 细胞的破碎 | 第11页 |
| 1.2.3 蛋白质的分离纯化 | 第11-13页 |
| 1.2.4 样品的浓缩、干燥及保存 | 第13页 |
| 1.3 蛋白质的晶体培养 | 第13-17页 |
| 1.3.1 蛋白质结晶的原理及基本过程 | 第13-14页 |
| 1.3.2 蛋白质晶体的培养方法 | 第14-15页 |
| 1.3.3 蛋白质结晶的影响因素 | 第15页 |
| 1.3.4 蛋白质晶体生长的优化 | 第15-16页 |
| 1.3.5 蛋白质晶体的衍射 | 第16-17页 |
| 1.4 课题的研究意义及主要研究内容 | 第17-18页 |
| 1.4.1 研究意义及可行性分析 | 第17页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第17-18页 |
| 第2章 Cytb_6f蛋白复合体分离提纯条件的优化 | 第18-34页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.3 所需溶液的配制 | 第20-21页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.2.1 菠菜的选取 | 第23页 |
| 2.2.2 菠菜类囊体膜的制备 | 第23-24页 |
| 2.2.3 细胞色素b_6f蛋白复合体的纯化 | 第24-27页 |
| 2.3 结果与分析 | 第27-30页 |
| 2.3.1 菠菜Cytb_6f粗样品的Q-HP阴离子交换FPLC | 第27-28页 |
| 2.3.2 菠菜Cytb_6f样品的蔗糖梯度离心和多肽组成 | 第28-29页 |
| 2.3.3 菠菜Cytb_6f样品的吸收光谱 | 第29页 |
| 2.3.4 菠菜Cytb_6f样品均一性的检测结果 | 第29-30页 |
| 2.4 讨论 | 第30-33页 |
| 2.4.1 分离纯化中的要点讨论 | 第30-31页 |
| 2.4.2 分离纯化中改进点的讨论 | 第31-33页 |
| 2.5 本章小结 | 第33-34页 |
| 第3章 菠菜Cytb_6f蛋白结晶 | 第34-46页 |
| 3.1 实验材料和仪器 | 第34-35页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第34页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第34页 |
| 3.1.3 所需溶液的配制 | 第34页 |
| 3.1.4 仪器设备与耗材 | 第34-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-38页 |
| 3.2.1 结晶用蛋白的预处理 | 第35页 |
| 3.2.2 实验仪器及耗材的预处理 | 第35页 |
| 3.2.3 结晶用试剂的预处理 | 第35-36页 |
| 3.2.4 结晶方法的选择 | 第36页 |
| 3.2.5 晶体生长的条件 | 第36-38页 |
| 3.3 实验结果和讨论 | 第38-44页 |
| 3.3.1 结晶方法选择的结果 | 第38页 |
| 3.3.2 生化条件的选择 | 第38-44页 |
| 3.3.3 物理条件的选择 | 第44页 |
| 3.3.4 数据的收集 | 第44页 |
| 3.4 本章小结 | 第44-46页 |
| 结论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-52页 |
| 攻读硕士学位期间所发表的论文 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54页 |
