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NFATs-ET1通路在肾癌细胞786O增殖和迁移中的作用及其机制

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
中英文缩略词表第10-11页
第1章 绪论第11-18页
    1.1 内皮素(ETs)第11-12页
    1.2 钙调神经磷酸酶(calcineurin,CaN)第12-14页
    1.3 活化T细胞核因子(nuclear factor of activated T cells,NFATs)第14-15页
    1.4 ET1-CaN-NFATs第15-18页
第2章不同肿瘤细胞系中ET1 和NFATs的表达差异第18-28页
    2.1 引言第18页
    2.2 实验材料与方法第18-26页
        2.2.1 实验材料第18-19页
        2.2.2 不同肿瘤细胞细胞的复苏第19-20页
        2.2.3 细胞培养及传代第20页
        2.2.4 细胞冻存第20页
        2.2.5 细胞RNA的提取第20页
        2.2.6 RNA浓度测定及鉴定第20-21页
        2.2.7 PT-PCR实验第21-23页
        2.2.8 细胞中总蛋白的提取第23页
        2.2.9 核浆分离技术提取浆蛋白和核蛋白第23页
        2.2.10 蛋白浓度的测定第23-24页
        2.2.11 蛋白印迹法即Western Blot检测目的蛋白的表达第24-26页
    2.3 实验结果第26-28页
        2.3.1 不同肿瘤细胞中NFATs和ET1 在mRNA水平的表达第26页
        2.3.2 786O和HEK293 中NFATs在蛋白水平的表达和核浆分布第26-28页
第3章 786O与HEK293 在细胞增殖和迁移方面的差异第28-31页
    3.1 引言第28页
    3.2 实验材料与方法第28-29页
        3.2.1 实验材料第28页
        3.2.2 细胞增殖实验第28页
        3.2.3 CCK8 实验第28-29页
        3.2.4 划痕实验第29页
    3.3 实验结果第29-31页
        3.3.1 细胞增殖差异第29-30页
        3.3.2786O细胞迁移能力大于HEK293 细胞第30-31页
第4章 CsA阻断CaN通路对 786O细胞的影响第31-37页
    4.1 引言第31页
    4.2 材料与方法第31-33页
        4.2.1 实验材料第31页
        4.2.2 RT-PCR实验第31页
        4.2.3 Western-Blot技术检测CsA作用后NFATc3 在 786O胞核胞浆中的分布情况第31-32页
        4.2.4 CCK8 技术检测第32页
        4.2.5 软琼脂实验第32页
        4.2.6 细胞凋亡实验第32-33页
    4.3 实验结果第33-37页
        4.3.1 CsA对ET1 和NFATc3 在mRNA水平表达的影响第33页
        4.3.2 CsA对NFATc3 核浆分布的影响第33-34页
        4.3.3 CsA对 786O和HEK293 细胞增殖能力的影响第34页
        4.3.4 CsA对 786O细胞迁移能力的影响第34-35页
        4.3.5 CsA对 786O细胞侵袭能力的影响第35-36页
        4.3.6 CsA对 786O细胞凋亡情况的影响第36-37页
第5章 讨论第37-40页
第6章 全文总结第40-41页
致谢第41-42页
参考文献第42-45页
附录第45-47页
攻读学位期间的研究成果第47-48页
综述第48-54页
    参考文献第52-54页

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