| 中文摘要 | 第4-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 中英文缩略词表 | 第13-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-15页 |
| 第2章 综述 | 第15-24页 |
| 2.1 miRNAs | 第15页 |
| 2.2 miRNAs的生物合成和功能 | 第15-16页 |
| 2.3 miRNAs与心血管系统 | 第16-21页 |
| 2.3.1 miRNAs与冠状动脉粥样硬化 | 第16-18页 |
| 2.3.2 miRNAs与心肌梗死 | 第18-19页 |
| 2.3.3 miRNAs与心肌 | 第19-20页 |
| 2.3.4 miRNAs与血管 | 第20-21页 |
| 2.4 miRNAs在疾病治疗中的作用 | 第21-23页 |
| 2.5 总结 | 第23-24页 |
| 第3章 材料与方法 | 第24-34页 |
| 3.1 主要仪器及试剂来源 | 第24-25页 |
| 3.2 临床研究对象选择 | 第25页 |
| 3.3 临床资料采集 | 第25页 |
| 3.4 冠状动脉造影方法及狭窄程度评价、侧枝循环分组 | 第25-26页 |
| 3.5 血浆标本采集 | 第26页 |
| 3.6 细胞获取及培养 | 第26页 |
| 3.7 qPCR法检测血浆中miR-210的表达 | 第26-28页 |
| 3.7.1 提取血浆中总RNA | 第26-27页 |
| 3.7.2 总RNA反转录为cDNA | 第27页 |
| 3.7.3 qPCR检测 | 第27-28页 |
| 3.8 测定血浆中EphrinA3的表达 | 第28-29页 |
| 3.9 测定血浆中VEGF的表达 | 第29页 |
| 3.10 HCAECs的缺氧暴露 | 第29-30页 |
| 3.11 HCAECs中miR-210及EphrinA3mRNA的提取及测定 | 第30-32页 |
| 3.11.1 提取HCAECs中总RNA | 第30页 |
| 3.11.2 总RNA反转录为cDNA | 第30-31页 |
| 3.11.3 qPCR检测miR-210及EphrinA3mRNA的表达 | 第31-32页 |
| 3.12 Westernblot检测EphrinA3蛋白表达 | 第32-33页 |
| 3.12.1 提取细胞中的总蛋白 | 第32页 |
| 3.12.2 检测蛋白浓度 | 第32页 |
| 3.12.3 煮蛋白 | 第32页 |
| 3.12.4 Westernblot | 第32-33页 |
| 3.13 统计学分析 | 第33-34页 |
| 第4章 结果 | 第34-46页 |
| 4.1 临床资料比较 | 第34-35页 |
| 4.2 冠心病组患者血浆中miR-210、EphrinA3和VEGF表达水平变化 | 第35-37页 |
| 4.3 侧枝循环良好组与不良组患者血浆中miR-210、EphrinA3和VEGF表达水平比较 | 第37-40页 |
| 4.4 冠心病组患者侧枝循环形成过程中血浆中miR-210、EphrinA3、VEGF三者的相关性 | 第40-41页 |
| 4.5 冠心病组患者侧枝循环形成过程中血浆中miR-210、VEGF与Gensini积分相关性 | 第41-43页 |
| 4.6 冠心病患者侧枝循环形成过程中血浆中HDL-C与Gensini积分、VEGF相关性 | 第43-44页 |
| 4.7 缺氧暴露后HCAECs细胞内miR-210的表达变化 | 第44页 |
| 4.8 缺氧暴露后HCAECs细胞内EphrinA3的表达变化 | 第44-46页 |
| 第5章 讨论 | 第46-50页 |
| 5.1 冠状动脉狭窄程度与侧枝循环形成 | 第46-47页 |
| 5.2 冠状动脉狭窄程度与缺氧对miR-210表达的影响 | 第47页 |
| 5.3 miR-210对侧枝循环形成的影响 | 第47-48页 |
| 5.4 miR-210调控VEGF的机制 | 第48-49页 |
| 5.5 HDL-C与侧枝循环形成的相关性 | 第49-50页 |
| 第6章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-63页 |
| 作者简介 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64页 |
