缩略语表 | 第9-10页 |
摘要 | 第10-13页 |
Abstract | 第13-16页 |
前言 | 第17-19页 |
第一章 早年应激致肠易激综合征大鼠肠道菌群和氨基酸代谢的变化 | 第19-36页 |
1.1 实验材料 | 第19-20页 |
1.1.1 实验动物 | 第19页 |
1.1.2 主要仪器 | 第19-20页 |
1.1.3 主要试剂 | 第20页 |
1.2 实验方法 | 第20-25页 |
1.2.1 母婴分离应激方法建立肠易激综合征大鼠模型 | 第20-21页 |
1.2.2 结直肠扩张试验 | 第21页 |
1.2.3 旷场试验 | 第21-22页 |
1.2.4 糖水试验 | 第22页 |
1.2.5 结肠HE病理染色 | 第22页 |
1.2.6 大鼠粪便和血清样本的采集 | 第22页 |
1.2.7 粪便样本细菌基因组DNA提取 | 第22-23页 |
1.2.8 粪便基因组16SrDNA高通量测序 | 第23-24页 |
1.2.9 粪便和血清样本的氨基酸检测 | 第24页 |
1.2.10 统计学方法 | 第24-25页 |
1.3 实验结果 | 第25-33页 |
1.3.1 肠易激综合征大鼠模型的评价 | 第25-29页 |
1.3.2 肠易激综合征大鼠肠道菌群变化 | 第29-31页 |
1.3.3 肠易激综合征大鼠肠道部分氨基酸代谢变化 | 第31-33页 |
1.4 讨论 | 第33-36页 |
第二章 同型半胱氨酸在早年应激所致肠易激综合征中的作用及对甲基化水平的影响 | 第36-58页 |
2.1 实验材料 | 第36-38页 |
2.1.1 实验动物 | 第36页 |
2.1.2 主要仪器 | 第36-37页 |
2.1.3 主要试剂 | 第37-38页 |
2.2 实验方法 | 第38-48页 |
2.2.1 母婴分离应激方法建立肠易激综合征大鼠模型 | 第38页 |
2.2.2 结直肠扩张试验 | 第38-39页 |
2.2.3 旷场试验 | 第39页 |
2.2.4 糖水试验 | 第39页 |
2.2.5 血浆Hcy水平检测 | 第39页 |
2.2.6 血浆S-腺苷甲硫氨酸水平检测 | 第39-40页 |
2.2.7 血浆S-腺苷同型半胱氨酸水平检测 | 第40页 |
2.2.8 结肠组织DNA总甲基化水平的检测 | 第40-42页 |
2.2.9 结肠组织DNMTsmRNA水平的检测 | 第42-44页 |
2.2.10 结肠组织DNMTs蛋白表达水平的检测 | 第44-47页 |
2.2.11 结肠组织DNMTs总活性的检测 | 第47-48页 |
2.2.12 统计学方法 | 第48页 |
2.3 实验结果 | 第48-56页 |
2.3.1 Hcy在早年应激致IBS中的损伤作用 | 第48-51页 |
2.3.2 Hcy对早年应激致IBS大鼠机体甲基化水平的影响 | 第51-56页 |
2.4 讨论 | 第56-58页 |
第三章 同型半胱氨酸介导的甲基化机制调控肠易激综合征的分子基础 | 第58-73页 |
3.1 实验材料 | 第58-59页 |
3.1.1 实验动物 | 第58页 |
3.1.2 主要仪器 | 第58页 |
3.1.3 主要试剂 | 第58-59页 |
3.2 实验方法 | 第59-62页 |
3.2.1 肠易激综合征大鼠模型建立及分组 | 第59页 |
3.2.2 结肠组织NDMTs总活性的检测 | 第59页 |
3.2.3 结肠组织DNA总甲基化水平的检测 | 第59页 |
3.2.4 结肠组织claudin-1/2基因启动子甲基化水平的检测 | 第59-61页 |
3.2.5 结肠组织claudin-1/2和MeCP2mRNA水平的检测 | 第61-62页 |
3.2.6 结肠组织Claudin-1/2和MeCP2蛋白表达水平的检测 | 第62页 |
3.2.7 统计学方法 | 第62页 |
3.3 实验结果 | 第62-71页 |
3.3.1 Hcy对IBS大鼠紧密连接蛋白Claudin-1/2和MeCP2的影响 | 第62-66页 |
3.3.2 降低甲基转移酶活性对结肠组织DNA总甲基化的影响 | 第66页 |
3.3.3 甲基化水平对紧密连接蛋白Claudin-1/2和MeCP2的影响 | 第66-71页 |
3.4 讨论 | 第71-73页 |
第四章 结论与展望 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-78页 |
作者在学期间取得的学术成果 | 第78-79页 |
个人简历 | 第79-80页 |
致谢 | 第80页 |