摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
文献综述 真菌多糖的生物活性研究进展 | 第14-43页 |
1 真菌多糖的免疫调节作用 | 第14-19页 |
1.1 真菌多糖对免疫器官的影响 | 第15页 |
1.2 真菌多糖对免疫细胞的影响 | 第15-16页 |
1.3 真菌多糖对补体系统的影响 | 第16页 |
1.4 真菌多糖对细胞因子的影响 | 第16-17页 |
1.5 真菌多糖的免疫调节作用机理 | 第17-19页 |
2 真菌多糖的抗氧化作用 | 第19-21页 |
2.1 真菌多糖的体外抗氧化活性 | 第19-20页 |
2.2 真菌多糖的体内抗氧化活性 | 第20-21页 |
2.3 真菌多糖抗氧化活性机理 | 第21页 |
3 真菌多糖的抗肿瘤作用 | 第21-26页 |
3.1 抑制肿瘤细胞增殖、诱导肿瘤细胞分化及凋亡 | 第22-23页 |
3.2 干扰肿瘤细胞核酸与蛋白质的合成,影响细胞周期 | 第23页 |
3.3 调控癌基因 | 第23-25页 |
3.4 抑制肿瘤新生血管生成 | 第25-26页 |
4 真菌多糖的抗病毒作用 | 第26-27页 |
5 真菌多糖的降血糖作用 | 第27-29页 |
6 真菌多糖的降血脂作用 | 第29-30页 |
7 真菌多糖的其他生物学活性 | 第30页 |
8 本课题的研究目的、意义及主要内容 | 第30-32页 |
8.1 研究目的、意义 | 第30-31页 |
8.2 主要研究内容 | 第31-32页 |
参考文献 | 第32-43页 |
第一章 块菌多糖的提取工艺研究 | 第43-59页 |
1.1 材料与仪器 | 第43-44页 |
1.1.1 实验材料 | 第43页 |
1.1.2 实验试剂 | 第43页 |
1.1.3 主要仪器 | 第43-44页 |
1.2 实验方法 | 第44-47页 |
1.2.1 块菌粗多糖的提取过程 | 第44页 |
1.2.2 响应面法优化块菌粗多糖的提取工艺 | 第44-45页 |
1.2.3 多糖得率的计算方法 | 第45页 |
1.2.4 块菌粗多糖的理化性质分析 | 第45-47页 |
1.3 结果与分析 | 第47-55页 |
1.3.1 单因素实验结果 | 第47-49页 |
1.3.2 响应面分析因素水平的选取 | 第49-53页 |
1.3.3 块菌粗多糖的理化性质 | 第53-55页 |
1.4 讨论 | 第55-57页 |
1.5 小结 | 第57页 |
参考文献 | 第57-59页 |
第二章 块菌粗多糖的体内外抗氧化作用 | 第59-71页 |
2.1 材料与仪器 | 第59-60页 |
2.1.1 实验材料 | 第59页 |
2.1.2 实验动物 | 第59页 |
2.1.3 实验试剂 | 第59-60页 |
2.1.4 主要仪器 | 第60页 |
2.2 实验方法 | 第60-63页 |
2.2.1 块菌粗多糖的体外抗氧化活性 | 第60-61页 |
2.2.2 块菌粗多糖的体内抗氧化活性 | 第61-62页 |
2.2.3 数据统计 | 第62-63页 |
2.3 结果与分析 | 第63-66页 |
2.3.1 块菌粗多糖的体外抗氧化活性 | 第63-65页 |
2.3.2 块菌粗多糖对免疫抑制小鼠抗氧化功能的影响 | 第65-66页 |
2.4 讨论 | 第66-68页 |
2.4.1 块菌多糖的体外抗氧化活性 | 第66-67页 |
2.4.2 块菌多糖的体内抗氧化活性 | 第67-68页 |
2.5 小结 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-71页 |
第三章 块菌粗多糖的免疫调节作用 | 第71-86页 |
3.1 材料与仪器 | 第71-72页 |
3.1.1 实验材料 | 第71页 |
3.1.2 实验动物 | 第71页 |
3.1.3 主要试剂 | 第71-72页 |
3.1.4 主要仪器 | 第72页 |
3.2 实验方法 | 第72-75页 |
3.2.1 体外实验 | 第72-74页 |
3.2.2 体内试验 | 第74-75页 |
3.2.3 数据统计 | 第75页 |
3.3 结果与分析 | 第75-81页 |
3.3.1 体外实验结果 | 第75-80页 |
3.3.2 体内实验 | 第80-81页 |
3.4 讨论 | 第81-84页 |
3.4.1 CTP体外对免疫细胞活性的影响 | 第81-83页 |
3.4.2 CTP在体内对小鼠免疫活性的影响 | 第83-84页 |
3.5 小结 | 第84页 |
参考文献 | 第84-86页 |
第四章 块菌多糖的纯化 | 第86-98页 |
4.1 材料与仪器 | 第86-87页 |
4.1.1 实验材料 | 第86页 |
4.1.2 主要试剂 | 第86-87页 |
4.1.3 主要仪器 | 第87页 |
4.2 方法 | 第87-89页 |
4.2.1 多糖含量测定 | 第87页 |
4.2.2 蛋白质含量测定 | 第87页 |
4.2.3 大孔吸附树脂对块菌粗多糖脱色 | 第87-89页 |
4.2.4 冻融分离水溶性块菌多糖 | 第89页 |
4.2.5 块菌多糖的阴离子交换柱层析 | 第89页 |
4.2.6 紫外扫描 | 第89页 |
4.2.7 高效液相色谱法测定块菌多糖的纯度及分子量 | 第89页 |
4.3 结果与分析 | 第89-94页 |
4.3.1 AB-8大孔树脂对多糖脱色率的影响 | 第89-91页 |
4.3.2 DEAE Sepharse FF阴离子交换柱层析对块菌多糖的分离纯化 | 第91-92页 |
4.3.3 WSTP的纯度及分子量测定 | 第92-94页 |
4.4 讨论 | 第94-96页 |
4.4.1 块菌多糖的纯化过程 | 第94-95页 |
4.4.2 WSTP的性质 | 第95-96页 |
4.5 小结 | 第96页 |
参考文献 | 第96-98页 |
有五章块菌多糖对RAW264.7分泌细胞因子的影响 | 第98-109页 |
5.1 材料与仪器 | 第98-99页 |
5.1.1 实验材料 | 第98页 |
5.1.2 供试细胞 | 第98页 |
5.1.3 主要试剂 | 第98页 |
5.1.4 主要仪器 | 第98-99页 |
5.2 实验方法 | 第99-100页 |
5.2.1 小鼠单核巨噬细胞系RAW264.7的培养 | 第99页 |
5.2.2 实验分组及加样 | 第99页 |
5.2.3 WSTP对RAW264.7外部形态变化的影响 | 第99页 |
5.2.4 WSTP对RAW264.7产生NO能力的检测 | 第99页 |
5.2.5 WSTP对RAW264.7分泌细胞因子的影响 | 第99-100页 |
5.2.6 数据统计 | 第100页 |
5.3 结果与分析 | 第100-105页 |
5.3.1 WSTP对RAW264.7外部形态变化的影响 | 第100页 |
5.3.2 WSTP对RAW264.7产生NO能力的检测 | 第100-101页 |
5.3.3 WSTP对RAW264.7分泌细胞因子的影响 | 第101-105页 |
5.4 讨论 | 第105-107页 |
5.5 小结 | 第107页 |
参考文献 | 第107-109页 |
第六章 块菌多糖对RAW264.7细胞因子mRNA表达的影响 | 第109-123页 |
6.1 材料与仪器 | 第109-110页 |
6.1.1 实验材料 | 第109页 |
6.1.2 供试细胞 | 第109页 |
6.1.3 主要试剂 | 第109-110页 |
6.1.4 主要仪器 | 第110页 |
6.2 实验方法 | 第110-113页 |
6.2.1 引物设计 | 第110-111页 |
6.2.2 RAW264.7的培养 | 第111页 |
6.2.3 分组与处理 | 第111页 |
6.2.4 RNA的抽提 | 第111页 |
6.2.5 cDNA的合成(反转录) | 第111-112页 |
6.2.6 实时荧光定量PCR | 第112页 |
6.2.7 RT-PCR扩增产物电泳分析 | 第112页 |
6.2.8 比较域值法来测定目的基因的相对表达 | 第112-113页 |
6.2.9 数据统计 | 第113页 |
6.3 结果与分析 | 第113-120页 |
6.3.1 RT-PCR标准曲线、熔解曲线及扩增曲线及电泳图 | 第113-115页 |
6.3.2 WSTP对IL-1α mRNA表达的影响 | 第115-116页 |
6.3.3 WSTP对IL-1β mRNA表达的影响 | 第116-118页 |
6.3.4 WSTP对IL-6 mRNA表达的影响 | 第118-119页 |
6.3.5 WSTP对TNF-α mRNA表达的影响 | 第119-120页 |
6.4 讨论 | 第120-121页 |
6.5 小结 | 第121-122页 |
参考文献 | 第122-123页 |
全文总结 | 第123-125页 |
论文创新点 | 第125-126页 |
展望 | 第126-127页 |
致谢 | 第127-128页 |
攻读学位期间发表论文 | 第128页 |