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块菌多糖的制备及其免疫调节活性研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
文献综述 真菌多糖的生物活性研究进展第14-43页
    1 真菌多糖的免疫调节作用第14-19页
        1.1 真菌多糖对免疫器官的影响第15页
        1.2 真菌多糖对免疫细胞的影响第15-16页
        1.3 真菌多糖对补体系统的影响第16页
        1.4 真菌多糖对细胞因子的影响第16-17页
        1.5 真菌多糖的免疫调节作用机理第17-19页
    2 真菌多糖的抗氧化作用第19-21页
        2.1 真菌多糖的体外抗氧化活性第19-20页
        2.2 真菌多糖的体内抗氧化活性第20-21页
        2.3 真菌多糖抗氧化活性机理第21页
    3 真菌多糖的抗肿瘤作用第21-26页
        3.1 抑制肿瘤细胞增殖、诱导肿瘤细胞分化及凋亡第22-23页
        3.2 干扰肿瘤细胞核酸与蛋白质的合成,影响细胞周期第23页
        3.3 调控癌基因第23-25页
        3.4 抑制肿瘤新生血管生成第25-26页
    4 真菌多糖的抗病毒作用第26-27页
    5 真菌多糖的降血糖作用第27-29页
    6 真菌多糖的降血脂作用第29-30页
    7 真菌多糖的其他生物学活性第30页
    8 本课题的研究目的、意义及主要内容第30-32页
        8.1 研究目的、意义第30-31页
        8.2 主要研究内容第31-32页
    参考文献第32-43页
第一章 块菌多糖的提取工艺研究第43-59页
    1.1 材料与仪器第43-44页
        1.1.1 实验材料第43页
        1.1.2 实验试剂第43页
        1.1.3 主要仪器第43-44页
    1.2 实验方法第44-47页
        1.2.1 块菌粗多糖的提取过程第44页
        1.2.2 响应面法优化块菌粗多糖的提取工艺第44-45页
        1.2.3 多糖得率的计算方法第45页
        1.2.4 块菌粗多糖的理化性质分析第45-47页
    1.3 结果与分析第47-55页
        1.3.1 单因素实验结果第47-49页
        1.3.2 响应面分析因素水平的选取第49-53页
        1.3.3 块菌粗多糖的理化性质第53-55页
    1.4 讨论第55-57页
    1.5 小结第57页
    参考文献第57-59页
第二章 块菌粗多糖的体内外抗氧化作用第59-71页
    2.1 材料与仪器第59-60页
        2.1.1 实验材料第59页
        2.1.2 实验动物第59页
        2.1.3 实验试剂第59-60页
        2.1.4 主要仪器第60页
    2.2 实验方法第60-63页
        2.2.1 块菌粗多糖的体外抗氧化活性第60-61页
        2.2.2 块菌粗多糖的体内抗氧化活性第61-62页
        2.2.3 数据统计第62-63页
    2.3 结果与分析第63-66页
        2.3.1 块菌粗多糖的体外抗氧化活性第63-65页
        2.3.2 块菌粗多糖对免疫抑制小鼠抗氧化功能的影响第65-66页
    2.4 讨论第66-68页
        2.4.1 块菌多糖的体外抗氧化活性第66-67页
        2.4.2 块菌多糖的体内抗氧化活性第67-68页
    2.5 小结第68-69页
    参考文献第69-71页
第三章 块菌粗多糖的免疫调节作用第71-86页
    3.1 材料与仪器第71-72页
        3.1.1 实验材料第71页
        3.1.2 实验动物第71页
        3.1.3 主要试剂第71-72页
        3.1.4 主要仪器第72页
    3.2 实验方法第72-75页
        3.2.1 体外实验第72-74页
        3.2.2 体内试验第74-75页
        3.2.3 数据统计第75页
    3.3 结果与分析第75-81页
        3.3.1 体外实验结果第75-80页
        3.3.2 体内实验第80-81页
    3.4 讨论第81-84页
        3.4.1 CTP体外对免疫细胞活性的影响第81-83页
        3.4.2 CTP在体内对小鼠免疫活性的影响第83-84页
    3.5 小结第84页
    参考文献第84-86页
第四章 块菌多糖的纯化第86-98页
    4.1 材料与仪器第86-87页
        4.1.1 实验材料第86页
        4.1.2 主要试剂第86-87页
        4.1.3 主要仪器第87页
    4.2 方法第87-89页
        4.2.1 多糖含量测定第87页
        4.2.2 蛋白质含量测定第87页
        4.2.3 大孔吸附树脂对块菌粗多糖脱色第87-89页
        4.2.4 冻融分离水溶性块菌多糖第89页
        4.2.5 块菌多糖的阴离子交换柱层析第89页
        4.2.6 紫外扫描第89页
        4.2.7 高效液相色谱法测定块菌多糖的纯度及分子量第89页
    4.3 结果与分析第89-94页
        4.3.1 AB-8大孔树脂对多糖脱色率的影响第89-91页
        4.3.2 DEAE Sepharse FF阴离子交换柱层析对块菌多糖的分离纯化第91-92页
        4.3.3 WSTP的纯度及分子量测定第92-94页
    4.4 讨论第94-96页
        4.4.1 块菌多糖的纯化过程第94-95页
        4.4.2 WSTP的性质第95-96页
    4.5 小结第96页
    参考文献第96-98页
有五章块菌多糖对RAW264.7分泌细胞因子的影响第98-109页
    5.1 材料与仪器第98-99页
        5.1.1 实验材料第98页
        5.1.2 供试细胞第98页
        5.1.3 主要试剂第98页
        5.1.4 主要仪器第98-99页
    5.2 实验方法第99-100页
        5.2.1 小鼠单核巨噬细胞系RAW264.7的培养第99页
        5.2.2 实验分组及加样第99页
        5.2.3 WSTP对RAW264.7外部形态变化的影响第99页
        5.2.4 WSTP对RAW264.7产生NO能力的检测第99页
        5.2.5 WSTP对RAW264.7分泌细胞因子的影响第99-100页
        5.2.6 数据统计第100页
    5.3 结果与分析第100-105页
        5.3.1 WSTP对RAW264.7外部形态变化的影响第100页
        5.3.2 WSTP对RAW264.7产生NO能力的检测第100-101页
        5.3.3 WSTP对RAW264.7分泌细胞因子的影响第101-105页
    5.4 讨论第105-107页
    5.5 小结第107页
    参考文献第107-109页
第六章 块菌多糖对RAW264.7细胞因子mRNA表达的影响第109-123页
    6.1 材料与仪器第109-110页
        6.1.1 实验材料第109页
        6.1.2 供试细胞第109页
        6.1.3 主要试剂第109-110页
        6.1.4 主要仪器第110页
    6.2 实验方法第110-113页
        6.2.1 引物设计第110-111页
        6.2.2 RAW264.7的培养第111页
        6.2.3 分组与处理第111页
        6.2.4 RNA的抽提第111页
        6.2.5 cDNA的合成(反转录)第111-112页
        6.2.6 实时荧光定量PCR第112页
        6.2.7 RT-PCR扩增产物电泳分析第112页
        6.2.8 比较域值法来测定目的基因的相对表达第112-113页
        6.2.9 数据统计第113页
    6.3 结果与分析第113-120页
        6.3.1 RT-PCR标准曲线、熔解曲线及扩增曲线及电泳图第113-115页
        6.3.2 WSTP对IL-1α mRNA表达的影响第115-116页
        6.3.3 WSTP对IL-1β mRNA表达的影响第116-118页
        6.3.4 WSTP对IL-6 mRNA表达的影响第118-119页
        6.3.5 WSTP对TNF-α mRNA表达的影响第119-120页
    6.4 讨论第120-121页
    6.5 小结第121-122页
    参考文献第122-123页
全文总结第123-125页
论文创新点第125-126页
展望第126-127页
致谢第127-128页
攻读学位期间发表论文第128页

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