| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-18页 |
| 1 本课题的研究背景 | 第13-14页 |
| 2 本课题的研究意义 | 第14-16页 |
| 参考文献 | 第16-18页 |
| 第二章 GDH在SD大鼠体内的组织分布方法的建立 | 第18-52页 |
| 1 SD大鼠肝组织样品中GDH含量测定方法的建立及方法学评价 | 第18-33页 |
| 1.1 材料、仪器和实验动物 | 第18-19页 |
| 1.2 实验方法和结果 | 第19-24页 |
| 1.2.1 色谱条件与质谱条件 | 第19-22页 |
| 1.2.2 储备液与工作溶液的配制 | 第22-23页 |
| 1.2.3 给药及组织样品采集 | 第23页 |
| 1.2.4 肝组织样品预处理 | 第23页 |
| 1.2.5 数据分析 | 第23-24页 |
| 1.3 肝组织方法学验证 | 第24-32页 |
| 1.3.1 肝组织方法学专属性 | 第24-25页 |
| 1.3.2 肝组织线性范围和定量下限 | 第25-26页 |
| 1.3.3 精密度和回收率考察 | 第26-28页 |
| 1.3.4 肝组织基质效应 | 第28-29页 |
| 1.3.5 肝组织稳定性 | 第29-32页 |
| 1.4 SD大鼠肝组织样品测定的方法学小结 | 第32-33页 |
| 2 SD大鼠脑组织样品中GDH含量测定方法的建立及方法学评价 | 第33-41页 |
| 2.1 材料、仪器和实验动物 | 第33页 |
| 2.2 实验方法和结果 | 第33-34页 |
| 2.2.1 色谱与质谱条件 | 第33页 |
| 2.2.2 储备液与工作溶液的配制 | 第33页 |
| 2.2.3 给药及脑组织样品采集 | 第33页 |
| 2.2.4 脑组织样品处理 | 第33-34页 |
| 2.3 脑组织方法学验证 | 第34-40页 |
| 2.3.1 脑组织方法学专属性 | 第34-36页 |
| 2.3.2 脑组织线性范围和定量下限 | 第36页 |
| 2.3.3 精密度和回收率 | 第36-38页 |
| 2.3.4 脑组织基质效应 | 第38-39页 |
| 2.3.5 脑组织稳定性 | 第39-40页 |
| 2.4 SD大鼠脑组织样品测定的方法学小结 | 第40-41页 |
| 3 SD大鼠肌肉组织样品中GDH含量测定方法的建立及方法学评价 | 第41-48页 |
| 3.1 材料、仪器和实验动物 | 第41页 |
| 3.2 实验方法和结果 | 第41-42页 |
| 3.2.1 色谱与质谱条件 | 第41页 |
| 3.2.2 储备液与工作溶液的配制 | 第41页 |
| 3.2.3 给药及组织样品采集 | 第41页 |
| 3.2.4 肌肉组织样品处理 | 第41-42页 |
| 3.3 肌肉组织方法学验证 | 第42-48页 |
| 3.3.1 肌肉组织方法学专属性 | 第42-43页 |
| 3.3.2 肌肉组织线性范围和定量下限 | 第43-44页 |
| 3.3.3 精密度和回收率 | 第44-46页 |
| 3.3.4 肌肉组织基质效应 | 第46页 |
| 3.3.5 肌肉组织稳定性考察 | 第46-48页 |
| 3.4 SD大鼠肌肉组织样品测定GDH的方法学小结 | 第48页 |
| 4 讨论 | 第48-50页 |
| 4.1 质谱条件优化 | 第48页 |
| 4.2 色谱条件优化 | 第48-49页 |
| 4.3 样品预处理条件优化 | 第49页 |
| 4.4 内标选择 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-52页 |
| 第三章 SD大鼠组织样品测定 | 第52-67页 |
| 1 SD大鼠各组织样品中GDH测定的随行标准曲线制备与评价 | 第52-55页 |
| 1.1 GDH随行标准溶液的配制 | 第52页 |
| 1.2 SD大鼠各组织样品中GDH的随行标准曲线制备与QC样品评价 | 第52-55页 |
| 2 GDH在SD大鼠体内的组织药物浓度－时间数据 | 第55-64页 |
| 3 GDH在SD大鼠体内组织分布情况 | 第64页 |
| 4 讨论 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-67页 |
| 第四章 GD在SD大鼠体内的排泄方法的建立 | 第67-96页 |
| 1 SD大鼠尿液中GDH含量测定方法的建立和方法学评价 | 第67-77页 |
| 1.1 材料、仪器和实验动物 | 第67-68页 |
| 1.2 实验方法和结果 | 第68-70页 |
| 1.2.1 色谱条件与质谱条件 | 第68-69页 |
| 1.2.2 储备液与工作溶液的配制 | 第69-70页 |
| 1.2.3 给药及尿液样品采集 | 第70页 |
| 1.2.4 尿液样品处理 | 第70页 |
| 1.3 尿液中GDH测定方法学验证 | 第70-77页 |
| 1.3.1 尿液中GDH测定方法学的专属性 | 第70-72页 |
| 1.3.2 尿液样品线性范围和定量下限 | 第72-73页 |
| 1.3.3 精密度和回收率考察 | 第73-75页 |
| 1.3.4 SD大鼠尿液基质效应 | 第75页 |
| 1.3.5 尿液样品稳定性 | 第75-76页 |
| 1.3.6 尿液样品的稀释效应考察 | 第76-77页 |
| 1.4 SD大鼠尿液样品中GDH测定的方法学小结 | 第77页 |
| 2 SD大鼠粪便中GDH含量测定方法的建立和方法学评价 | 第77-86页 |
| 2.1 材料、仪器和实验动物 | 第77页 |
| 2.2 实验方法和结果 | 第77-78页 |
| 2.2.1 色谱条件和质谱条件 | 第77-78页 |
| 2.2.2 储备液和工作溶液的配制 | 第78页 |
| 2.2.3 给药及粪便样品的采集 | 第78页 |
| 2.2.4 粪便样品预处理 | 第78页 |
| 2.3 SD大鼠粪便中GDH测定方法学验证 | 第78-86页 |
| 2.3.1 粪便中GDH测定方法的专属性 | 第78-80页 |
| 2.3.2 粪便样品线性范围和定量下限 | 第80-81页 |
| 2.3.3 精密度和回收率考察 | 第81-83页 |
| 2.3.4 SD大鼠粪便基质效应 | 第83-84页 |
| 2.3.5 SD大鼠粪便样品稳定性 | 第84-85页 |
| 2.3.6 SD大鼠粪便样品稀释效应考察 | 第85-86页 |
| 2.3.7 SD大鼠粪便样品中GDH测定方法学小结 | 第86页 |
| 3 SD大鼠胆汁中GDH含量测定方法的建立和方法学评价 | 第86-94页 |
| 3.1 材料、仪器和实验动物 | 第86页 |
| 3.2 实验方法和结果 | 第86-87页 |
| 3.2.1 色谱和质谱条件 | 第86页 |
| 3.2.2 储备液和工作溶液的配制 | 第86-87页 |
| 3.2.3 给药和胆汁样品的采集 | 第87页 |
| 3.2.4 胆汁样品预处理 | 第87页 |
| 3.3 SD大鼠胆汁中GDH测定方法学验证 | 第87-94页 |
| 3.3.1 SD大鼠胆汁中GDH测定方法的专属性 | 第87-89页 |
| 3.3.2 大鼠胆汁线性范围和定量下限 | 第89页 |
| 3.3.3 精密度和回收率考察 | 第89-91页 |
| 3.3.4 SD大鼠胆汁样品基质效应 | 第91-92页 |
| 3.3.5 SD大鼠胆汁样品稳定性考察考察 | 第92-93页 |
| 3.3.6 SD大鼠胆汁样品稀释效应 | 第93-94页 |
| 3.4 SD大鼠胆汁样品中GDH测定方法学小结 | 第94页 |
| 4 讨论 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-96页 |
| 第五章 SD大鼠排泄样品测定 | 第96-108页 |
| 1 SD大鼠各组织样品中GDH测定的标准曲线 | 第96-98页 |
| 1.1 GDH和泮托拉唑（内标）标准溶液的配制 | 第96页 |
| 1.2 SD大鼠排泄样品中GDH随行标准曲线与QC样品的制备 | 第96-98页 |
| 2 实验结果 | 第98-105页 |
| 2.1 SD大鼠尿液样品中GDH排泄结果 | 第98-100页 |
| 2.2 SD大鼠粪便样品中GDH排泄结果 | 第100-102页 |
| 2.3 SD大鼠胆汁样品中GDH的排泄结果 | 第102-104页 |
| 2.4 GDH在SD大鼠内排泄研究小结 | 第104-105页 |
| 3 讨论 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-108页 |
| 硕士期间发表论文 | 第108-109页 |
| 致谢 | 第109页 |
