| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 目录 | 第6-9页 |
| 第1章 前言 | 第9-17页 |
| 1.1 环境中 PBDES 污染 | 第9-11页 |
| 1.1.1 PBDEs 环境污染行为 | 第10-11页 |
| 1.1.2 PBDEs 污染现状 | 第11页 |
| 1.2 环境 PBDES 污染的微生物修复 | 第11-12页 |
| 1.3 蛋白质组学在环境污染修复中的应用 | 第12-13页 |
| 1.3.1 蛋白质组学概述 | 第12页 |
| 1.3.2 蛋白质组学研究策略和在环境中的主要应用 | 第12-13页 |
| 1.3.3 环境污染微生物修复的蛋白质组学研究 | 第13页 |
| 1.4 流式细胞术技术在微生物修复研究中的应用 | 第13-14页 |
| 1.5 本论文研究的意义和主要研究内容 | 第14-15页 |
| 1.5.1 研究意义 | 第14-15页 |
| 1.5.2 主要研究内容 | 第15页 |
| 1.6 技术路线 | 第15-16页 |
| 1.7 创新点 | 第16-17页 |
| 第2章 十溴联苯醚降解菌的筛选、鉴定与生长特性 | 第17-28页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第17-19页 |
| 2.1.1 实验样品 | 第17-18页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第18页 |
| 2.1.3 培养基和培养条件 | 第18页 |
| 2.1.4 实验设备 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 BDE-209 降解菌的筛选、鉴定 | 第19-20页 |
| 2.2.2 BDE-209 的测定 | 第20页 |
| 2.2.3 降解菌生长曲线测定 | 第20页 |
| 2.2.4 pH 对降解菌生长的影响 | 第20页 |
| 2.2.5 BDE-209 对降解菌生长的影响 | 第20-21页 |
| 2.2.6 菌体生长对体系 pH 的影响 | 第21页 |
| 2.2.7 温度对降解菌生长的影响 | 第21页 |
| 2.3 结果与分析 | 第21-27页 |
| 2.3.1 BDE-209 降解菌的筛选和鉴定 | 第21-23页 |
| 2.3.2 E. casseliflavus 的生长曲线 | 第23-24页 |
| 2.3.3 pH 对 E. casseliflavus 生长的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.4 BDE-209 对 E. casseliflavus 生长的影响 | 第25页 |
| 2.3.5 E. casseliflavus 生长对体系 pH 的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.6 温度对 E. casseliflavus 生长的影响 | 第26-27页 |
| 2.4 本章小结 | 第27-28页 |
| 第3章 E. CASSELIFLAVUS 对 BDE-209 的降解特性 | 第28-35页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第28页 |
| 3.1.1 实验菌种 | 第28页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第28页 |
| 3.1.3 培养基和培养条件 | 第28页 |
| 3.1.4 实验设备 | 第28页 |
| 3.2 实验方法 | 第28-29页 |
| 3.2.1 葡萄糖浓度对 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的影响 | 第28-29页 |
| 3.2.2 时间对 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的影响 | 第29页 |
| 3.2.3 投菌量对 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的影响 | 第29页 |
| 3.2.4 菌龄对 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的影响 | 第29页 |
| 3.2.5 降解体系中 BDE-209 的分布 | 第29页 |
| 3.3 结果与分析 | 第29-33页 |
| 3.3.1 葡萄糖浓度对 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的影响 | 第29-30页 |
| 3.3.2 E. casseliflavus 降解 BDE-209 随时间的变化 | 第30-31页 |
| 3.3.3 投菌量对 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的影响 | 第31-32页 |
| 3.3.4 菌龄对 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的影响 | 第32页 |
| 3.3.5 BDE-209 在 E. casseliflavus 中的分布 | 第32-33页 |
| 3.4 本章小结 | 第33-35页 |
| 第4章 BDE-209 对 E. CASSELIFLAVUS 细胞特性的影响 | 第35-49页 |
| 4.1 实验材料与设备 | 第35-36页 |
| 4.1.1 实验菌种 | 第35页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第35页 |
| 4.1.3 培养基和培养条件 | 第35-36页 |
| 4.1.4 实验设备 | 第36页 |
| 4.2 实验方法 | 第36-38页 |
| 4.2.1 菌体细胞表面疏水性的测定 | 第36页 |
| 4.2.2 E. casseliflavus 细胞质膜通透性实验 | 第36-37页 |
| 4.2.3 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的扫描电镜观察 | 第37页 |
| 4.2.4 E. casseliflavus 原生质体的制备 | 第37页 |
| 4.2.5 E. casseliflavus 处理 BDE-209 过程中细胞活性测定 | 第37页 |
| 4.2.6 E. casseliflavus 处理 BDE-209 过程中细胞凋亡检测 | 第37-38页 |
| 4.2.7 E. casseliflavus 处理 BDE-209 过程中细胞周期检测 | 第38页 |
| 4.3 结果与分析 | 第38-48页 |
| 4.3.1 BDE-209 对 E. casseliflavus 细胞表面疏水性的影响 | 第38-39页 |
| 4.3.2 不同浓度 BDE-209 对 E. casseliflavus 细胞质膜通透性的影响 | 第39-40页 |
| 4.3.3 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的扫描电镜观察 | 第40-42页 |
| 4.3.4 E. casseliflavus 原生质体的制备 | 第42-43页 |
| 4.3.5 E. casseliflavus 处理 BDE-209 过程中细胞活性变化 | 第43-44页 |
| 4.3.6 E. casseliflavus 处理 BDE-209 过程中细胞结构变化 | 第44-47页 |
| 4.3.7 E. casseliflavus 降解 BDE-209 的细胞周期变化 | 第47-48页 |
| 4.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第5章 E. CASSELIFLAVUS 降解 BDE-209 的差异蛋白分析 | 第49-58页 |
| 5.1 实验材料与设备 | 第49-50页 |
| 5.1.1 实验菌种 | 第49页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第49页 |
| 5.1.3 培养基和培养条件 | 第49页 |
| 5.1.4 实验设备 | 第49-50页 |
| 5.2 实验方法 | 第50-52页 |
| 5.2.1 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第50-51页 |
| 5.2.1.1 Bradford 法测定蛋白质浓度 | 第50页 |
| 5.2.1.2 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳条件的优化 | 第50-51页 |
| 5.2.1.3 细菌胞内外蛋白提取及 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第51页 |
| 5.2.2 E. casseliflavus 降解 BDE-209 差异蛋白表达 | 第51-52页 |
| 5.3 结果与分析 | 第52-56页 |
| 5.3.1 E. casseliflavus SDS-PAGE | 第52-54页 |
| 5.3.2 E. casseliflavus 降解 BDE-209 差异蛋白分析 | 第54-56页 |
| 5.4 本章小结 | 第56-58页 |
| 第6章 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 在校期间发表论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
