| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 英文缩略词表 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 1 材料与方法 | 第15-25页 |
| 1.1 主要材料与试剂 | 第15-16页 |
| 1.1.1 细菌、细胞和质粒来源 | 第15页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第15页 |
| 1.1.3 主要抗体 | 第15页 |
| 1.1.4 主要仪器设备 | 第15-16页 |
| 1.2 主要试剂配制 | 第16-21页 |
| 1.2.1 培养细胞所需配制的试剂 | 第16-17页 |
| 1.2.2 培养细菌的溶液 | 第17页 |
| 1.2.3 SDS-PAGE 溶液的配制 | 第17-20页 |
| 1.2.4 免疫荧光实验试剂的配制 | 第20-21页 |
| 1.3 主要方法 | 第21-25页 |
| 1.3.1 提取质粒 | 第21页 |
| 1.3.2 制备感受态 | 第21页 |
| 1.3.3 转化 | 第21页 |
| 1.3.4 细胞培养的方法 | 第21-22页 |
| 1.3.5 质粒转染细胞 | 第22页 |
| 1.3.6 细胞的裂解及蛋白浓度的测定 | 第22页 |
| 1.3.7 Western Blot 方法 | 第22-23页 |
| 1.3.8 原核蛋白诱导表达 | 第23-24页 |
| 1.3.9 免疫共沉淀 | 第24页 |
| 1.3.10 免疫荧光 | 第24页 |
| 1.3.11 GST pull-down | 第24-25页 |
| 2 结果 | 第25-33页 |
| 2.1 CO-IP 验证 UBA52 与 HSF4B 相互作用 | 第25页 |
| 2.2 UBA52 和 HSF4B 在细胞内共定位 | 第25-26页 |
| 2.3 PULL-DOWN 验证 UBA52 与 HSF4B（196-493）功能区域结合 | 第26-27页 |
| 2.4 HSF4B 过表达对 UBA52 在体内剪切没有影响 | 第27-28页 |
| 2.5 CO-IP 表明 UBA52 与 HSF4B 是间接相互作用 | 第28-29页 |
| 2.6 原核表达 UBA52 蛋白并验证与 HSF4B 在体外的相互作用 | 第29-30页 |
| 2.7 UBA52 对 HSF4B 转录活性的影响 | 第30-33页 |
| 3 讨论 | 第33-37页 |
| 4 结论 | 第37-39页 |
| 5 参考文献 | 第39-41页 |
| 综述 | 第41-51页 |
| 参考文献 | 第48-51页 |
| 致谢 | 第51-53页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第53-54页 |
